Новые технологии производства оздоровленного исходного материала в элитном семеноводстве картофеля

Обновлено: 18.09.2024

Федеральное государственное бюджетное учреждение

РОССИЙСКИЙ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫЙ ЦЕНТР

О технологии производства безвирусного семенного картофеля

Производство семенного картофеля – задача важная и ответственная. Ведь от нескольких небольших клубней зависит то, каким будет урожай с нескольких тысяч гектаров полей. Поэтому и подход к выращиванию семенного картофеля особый, тщательный и – не удивляйтесь! – научный. Современная биология способна изучать и влиять на растения на клеточном уровне. Это открывает широкие перспективы для использования потенциальных возможностей. В Прибайкалье высокие технологии в семеноводстве используются повсеместно, но сегодня поговорим о том, как выращивают семенной картофель и делают его устойчивым к болезням, вредителям и вирусам.

Выросшие из меристемы растения проверяют на вирусы. Для этого существует метод полимеразной цепной реакции (ПЦР) - он позволяет много раз копировать определённый участок ДНК растения при помощи ферментов в искусственных условиях. Этот способ появился ещё в прошлом веке и помог людям вылечить многие растения. Потом подходящий, здоровый материал разделяют на отдельные черенки в стерильных условия ламинар-боксов. Черенки выращиваются в пробирках с питательной средой при специальном освещении на стеллажах.

Осенью из теплиц собирают тепличные миниклубни (ТМК). И снова устраивают полный анализ методом ПЦР в аккредитованной лаборатории. Полученные из лаборатории протоколы испытания ТМК - первичный документ, подтверждающий качество семенного материала. Кроме того, он служит основой для последующей сертификации.

Выращивание супер-суперэлиты производится на изолированном участке с использованием специальной техники. Ботва удаляется до 10-15 августа, что предотвращает заражение растений, хотя и снижает количество убранных тонн. Производство семенного картофеля репродукций суперэлита и элита производится на арендованных полевых участках в рамках специальных соглашений с партнерами из РТ.

Получено клубней поколения ПП-1: сорт Зекура – 671 кг. Клубней всех фракций, в среднем от одного клубня – 215 гр. Сорт Ред Скарлетт – 907 кг. клубней всех фракций, в среднем от одного клубня – 224 гр. Всего получено клубней поколения ПП-1 – 1578 кг.

Элитный картофель выращивают научные учреждения или специализированные хозяйства под руководством опытных специалистов-семеноводов.

В основе его выращивания лежит отбор лучших по продуктивности здоровых растений с испытанием их вегетативного потомства (клонов), отбор растений и оценку клонов при выращивании элиты проводят по продуктивности и комплексу других признаков. Особое внимание при этом уделяют отбору растений не только по внешним признакам заболевания, но и по наличию болезней в скрытом виде. Для этого применяют специальные методы их обнаружения — серологический, иммуноферментный, индикаторный, прием индексации клубней, а также комплекс приемов по защите от засорения сорта примесями других сортов и от повторного заражения вирусными болезнями в процессе выращивания элиты картофеля.

Основным условием при получении высокопродуктивного семенного материала является защита его от болезней и вредителей. Благодаря вегетативному размножению картофеля большинство •болезней передается через клубни, накапливаясь в них из репродукции в репродукцию.

В настоящее время большинство элитовыращивающих хозяйств возделывают элиту картофеля на безвирусной основе. Элита картофеля на безвирусной основе превышает по урожайности элиту, выращенную только на основе визуального отбора, в среднем на 30% (Трофимец, 1982).

Основные элементы системы семеноводства картофеля на безвирусной основе следующие:

получение исходного безвирусного материала для выращивания элиты с применением специальных методов лечения зараженных сортов картофеля при помощи вычленения верхушечной меристемы в сочетании с термотерапией;
испытание и размножение вегетативного потомства оздоровленных растений в условиях, исключающих повторное заражение (изоляция питомников оздоровленного материала от зараженных посадок картофеля, плодовых и овощных культур, приусадебных участков, тепличных и парниковых хозяйств);
применение специальных агротехнических приемов, направленных на быстрейшее развитие и созревание картофеля с ранней уборкой до наступления периода массового лёта тлей — переносчиков вирусов;
химическая борьба с переносчиками вирусов, выбраковка больных клонов в питомниках, прочистка от больных растений в посадках суперэлиты и элиты, а также на участках размножения в семеноводческих посевах колхозов и совхозов;
применение специальных методов диагностики вирусов в латентном состоянии при отборе и оценке растений и клонов.

Отбор здоровых растений с применением серологического и индикаторного методов оценки скрытой зараженности вирусами по отдельным сортам бывает малоэффективным. Поэтому новым этапом в получении безвирусного исходного материала для выращивания элиты оказалась разработка методов активного лечения зараженных сортов картофеля. Основными из этих методов являются следующие: термотерапия верхушечной меристемы и метод, основанный на сочетании термотерапии и выращивания растений из верхушечных меристем.

При термотерапии зараженные клубни выдерживают или выращивают в условиях повышенной температуры, при которой вирусная инфекция погибает. Наиболее эффективен прогрев разрезанных на части клубней при температуре 40°С по 2—3 ч в сутки с выдерживанием их в остальное время суток при 16—20°С в течение 56 дней. Хорошие результаты были получены также при двухчасовом выдерживании клубней при температуре 45°С (в остальное время суток — при температуре 25—30°С) в течение 2 недель. Метод термотерапии эффективен в борьбе с вирусом скручивания листьев. При лечении картофеля от мозаичных вирусов и вироида веретеновидности клубней этот метод оказался неэффективным.

Метод верхушечной меристемы с успехом применяют при оздоровлении картофеля от вирусов во всех случаях, когда другие методы недейственны. Он основан на том, что меристематическая зона делящихся клеток верхушки ростка клубня свободна или может быть освобождена от вирусной инфекции при ее культивировании в искусственных условиях на питательной среде, содержащей вещества, ингибирующие размножение вируса. Зона эта составляет всего 0,1—0,3 мм. Поэтому работу по получению здоровых растений из верхушечных меристем ростков картофеля проводят в специально оснащенных лабораториях.

В НИИКХ разработана и широко применяется следующая система оздоровления сортов картофеля:

подготовка клубней для вычленения меристем, их проращивание в течение 1—2 месяцев при температуре 35—37°С в термостабильных камерах, проверка исходной зараженности методом индексации с дополнительной серологической и индикаторной диагностикой;
вычленение меристем и посадка их в пробирки на питательную среду, выращивание растений в пробирках в помещении с регулируемыми условиями температуры, влажности и освещенности;
пересадка проростков длиной 3—5 мм на свежую питательную среду для ускорения роста и укоренения;
черенкование полученных растений по количеству междоузлий и посадка черенков на питательную среду в пробирки;
определение зараженности черенка методом электронной микроскопии или иммуноферментным методом, после чего вирусные растения выбраковывают, а безвирусные становятся родоначальниками линий, которые размножают методом черенкования (метод черенкования позволяет получить в течение 3 месяцев до 2 тыс. растений);
повторная двух-трехкратная проверка линий иммуноферментным методом в процессе черенкования с выбраковкой зараженных растений;
пересадка растений из пробирок в почву теплицы для получения клубней;
применение методов ускоренного размножения в закрытом грунте для получения исходного материала в количестве, необходимом для закладки клоновых питомников (укоренение верхушек и пазушных побегов, отводки, черенкование ростков после длительного проращивания клубней, двухурожайная культура).

Питательными средами для выращивания растений из меристем служат многокомпонентные смеси, включающие минеральные соли, витамины, регуляторы роста, сахара, источники аминокислот и др. Наиболее полно отвечает потребностям культуры картофеля среда Мурасиге-Скуга с добавлением активированного угля.

Источник: Б.А. Писарев. Производство раннего картофеля. — М.: Россельхозиздат, 1986

Если вы нашли ошибку, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter.

Повышение уровня рентабельности картофелепроизводящих хозяйств в условиях рыночной экономики можно обеспечить за счет высококачественных семян.

Урожайность семенного картофеля зависит от сложного комплекса факторов: посевных качеств, биологических особенностей сортов, условий выращивания и т.д. При непрерывном вегетативном размножении картофеля с каждой новой репродукцией его сортовые, посевные качества и урожайные свойства снижаются вследствие заражения возбудителями вирусных, грибных и бактериальных болезней. Поэтому семенной материал следует систематически обновлять на более здоровый с применением эффективных методов биотехнологии.

Современное семеноводство картофеля широко использует биотехнологический метод апикальной меристемы для освобождения от вирусной инфекции. Схема производства безвирусных клубней включает получение микрорастений (клонов) картофеля, затем высадку их в теплицу или под укрытия для избежание контакта с насекомыми, в результате чего выращивают супер-супер элиту в виде миниклубней. При высадке миниклубней в полевые условия получают суперэлитный материал в виде клубней стандартных размеров. Элитный посадочный материал картофеля сохраняет устойчивость к вирусным заболеваниям и не теряет урожайность в течение 6-7 лет.

В Казахском НИИ картофелеводства и овощеводства с 1988 года ведутся научно-исследовательские работы по разработке научных основ внедрения системы семеноводства картофеля на безвирусной основе. Разработана технология микроклонального размножения, в результате чего в настоящее время в массово тиражируются сорта картофеля Казахстанской селекции.

Метод микроклонального размножения позволяет за короткий срок получать большое количество однородного посадочного материала растений. По мнению многих исследователей, в процессе микроклонального размножения нет риска повторного заражения растений. Достижения в области культуры in vitro привели к созданию эффективных и экономически выгодных технологий клонального микроразмножения растений. В основе клонального микроразмножения лежит использование уникальной способности растительных клеток реализовать присущую им тотипотентность под влиянием экспериментальных воздействий и дать начало целому растительному организму. Преимуществом клонального микроразмножения растений в сравнении с традиционными методами являются значительно более высокие коэффициенты размножения достигающие 105 мериклонов в год при 5-100 растениях от одного клубня, обычно получаемых традиционно за этот же срок.

В КазНИИКО процесс микроклонального размножения картофеля проходит следующие этапы:

1-этап – введение экспланта, изолированного из апикальной меристемы в культуру in vitro;

2-этап – микроклональное размножение, образование побегов и увеличение их количества;

3-этап – укоренение побегов, дальнейшее размножение растений-регенерантов;

4-этап – высадка растений в полевые условия.

Ежегодно в институте путем клонирования культивируются 150-180 тысяч растений in vitro, которые высаживаются в условия in vivo, из них в закрытом и открытом грунте производятся до 500 тысяч штук миниклубней для дальнейшего размножения и получения оригинальных и элитных семян картофеля.

Исходный материал отечественных сортов на оздоровленной основе, производимый Казахским НИИ картофелеводства и овощеводства, поставляется в научно-производственные учреждения и семеноводческие хозяйства республики для размножения и получения высших репродукций семенного материала картофеля.

Для оригинаторов сортов важное значение имеет формирование и поддержание коллекции оздоровленных сортообразцов, необходимых для выполнения производственных программ по их ускоренному размножению в объемах, соответствующих реальному и перспективному спросу в условиях формирующегося отечественного рынка сортового семенного материала.

Учитывая международный опыт, в последние годы в КазНИИКО усовершенствована технология оздоровления сортов, основанная на сочетании полевых и лабораторных методов. Создан банк здоровых сортов картофеля в культуре in vitro и in vivo. Коллекционные сортообразцы, сохраняемые в культуре in vitro, ежегодно оцениваются в полевых условиях по морфологическим и хозяйственным признакам, на сортовую типичность и наличие вирусных инфекций в скрытой форме с использованием современных методов диагностики (ИФА).+

Банк здоровых сортов КазНИИКО в культуре in vitro в настоящее время насчитывает более 30 сортов селекции института и других, наиболее значимых для картофелеводства сортов отечественной и зарубежной селекции. Этот исходный материал – основа оригинального семеноводства картофеля регионов Казахстана и широко используется для микроклонального размножения наиболее распространенных сортов.

Таким образом, исходный семенной материал состоит из банка здоровых сортов картофеля (БЗСК), и материала, размножаемого в культуре in vitro (пробирочные растения).

В настоящее время внедрение разработок по микроклональному размножению и получению оздоровленного исходного материала картофеля проводятся в элитовыращивающих хозяйствах в различных регионах республики Казахстан.

Ж. ТОКБЕРГЕНОВА, Казахский НИИ картофелеводства и овощеводства

Одним из главных факторов, гарантирующих достижение потенциально возможного урожая картофеля в любых почвенно-климатических условиях, является высококачественный, свободный от вирусной и бактериальной инфекции посадочный материал 3. Растения, содержащие патологии различного происхождения, в своем урожае образуют клубни низкого качества (по содержанию сухого вещества, крахмала, витаминов), а также существенно (на 1980%) снижают урожайность. В таком материале количество крахмала может уменьшиться на 3-5%, а содержание витаминов — в 2-3 раза 5.

В последние годы большое значение приобрела культура in vitro и для поддерживающей селекции картофеля. Создание банка здоровых сортов позволяет вовлечь в селекционный процесс родительские формы, свободные от вирусов, бактерий и грибов, и получать в результате скрещивания новые генотипы с высокими качественными характеристиками.

Одной из важнейших задач интенсивного семеноводства картофеля является ускоренное размножение оздоровленных клубней. В модульной технологии ускоренного размножения семенного картофеля сочетаются два взаимозависимых компонента современного семеноводства — освобождение клубней от инфекции и размножение полученного высококачественного материала с минимально возможным накоплением патогенов. Она может включать как все модули, так и часть из них.

Модуль I. Оздоровление исходного материала, размножение in vitro, получение меристемных пробирочных растений, получение мини-клубней.

Модуль II. Размножение оздоровленного материала на основе микроспорофита, а также управления процессом роста апикальной меристемы этиолированных побегов (патенты РФ №№ 2261587, 2365089 и 2415558).

Модуль III. Получение клубней с использованием ярусного способа размножения (оформлена заявка на изобретение).

Модуль IV. Использование агротехнических приемов для увеличения коэффициента размножения семенного материала в производственных условиях.

Основные принципы работы при поддержании банка здоровых сортов картофеля в полевой культуре и in vitro

В современной классификации семенного картофеля к категории исходного материала относится картофель, освобожденный от вирусной и других инфекций методами биотехнологии и клонового отбора. Применение биотехнологического метода заключается в использовании лабораторного способа оздоровления перспективных сортов и гибридов картофеля, получении новых линий in vitro и их ускоренном микрокло- нальном размножении. Преимущества данного метода по сравнению с традиционным клоновым отбором состоит в сокращении периода получения здоровых линий, их ускоренном микроклональном размножении в искусственных лабораторных условиях и производства необходимого количества мини-клубней. Однако применение исключительно биотехнологического метода, по мнению ряда исследователей, может привести к проявлению различных модификаций и соответственно сказаться на сортовой чистоте производимого семенного материала. Метаморфозы могут проявиться как при оздоровлении сортов, так и в результате их длительного депонирования in vitro.

Технологический процесс введения в культуру in vitro основан на применении метода ростовых черенков (рис.1). Подготовку образцов к введению в культуру начинают по мере прорастания клубней. Проросшие клубни нумеруют и индивидуально тестируют на наличие вирусной инфекции методом им- муноферментного анализа (ИФА). Клубни, свободные от фитопатогенной инфекции, размещают в темноте для получения этиолированных ростков. К черенкованию приступают при достижении ростков длиной не менее 10-20 см. Снятые с каждого клубня ростки индивидуально стерилизуют, в асептических условиях разрезают на черенки и размещают в пробирки с питательной средой.

Рис.1. Применение метода ростовых черенков при введении новых линий в культуру ткани

Через 20-30 дней после введения в культуру ткани формируются растения с 5-6 листочками. При использовании метода ростковых черенков с одного клубня удается получить не более 10-15 микрорастений. Данный исходный материал проходит повторное тестирование на наличие скрытой зараженности. Свободные по результатам диагностики линии in vitro черенкуют, и часть микрорастений (10-15) поступают для формирования банка in vitro на основе БЗСК, остальные — для клонального микроразмножения, включения в семеноводческие программы и производства исходного материала в виде микрорастений.

Преимущество применяемого метода отбора базовых клонов с использованием многократного улучшающего отбора и ускоренного размножения оздоровленного исходного материала картофеля состоит в систематическом мониторинге качества сорто- образцов в полевых питомниках БЗСК и в культуре in vitro. Главным критерием оценки материала по сравнению с проведением отбора в питомниках первичного семеноводства (традиционный метод) является применение непрерывного многократного улучшающего отбора в питомниках БЗСК в сочетании с высокочувствительными диагностическими методами оценки материала на наличие фитопатогенной инфекции и получении здорового клубневого материала.

Получение здорового исходного материала на основе БЗСК и его ускоренное клональное микроразмножение в культуре in vitro позволяет с максимальной эффективностью поддерживать биологический потенциал сортов картофеля, сохранять типичность сортов на том уровне, на котором они были созданы селекционерами, и производить необходимый объем пробирочного материала для оригинального семеноводства.

В 2011 г. во время проведения Международной научно-практической конференции, посвященной 80- летию ВНИИКХ (12-14 июля), была осуществлена независимая экспертная оценка качества сортов и линий in vitro из БЗСК. Оздоровленный исходный материал ВНИИКХ в виде микрорастений был протестирован по шести основным вирусам картофеля представителями европейской компании Bioreba (Швейцария). Данная компания является одной их ведущих на европейском рынке по производству оборудования, реактивов и диагностике сельскохозяйственных культур на наличие патологий различного происхождения. По результатам проведенной экспертизы весь набор протестированных сортов и линий in vitro (94 образца) оказался свободным от вирусной инфекции. Проведенная экспертная оценка позволяет приравнивать полученный исходный материал из БЗСК к категории предбазисного (Pre-Basic Seed) семенного материала по стандарту ЕЭК ООН.

Проведение лабораторного тестирования ИФА по листовым пробам в период вегетации микрорастений и послеуборочного зимнего клубневого контроля мини-клубней подтвердило высокое исходное качество производимого материала. По результатам диагностики исследуемые партии оказались свободными от вирусной инфекции.

В 2011 г. полученный урожай мини-клубней использовали для закладки питомника первого полевого поколения. Контроль качества производимой высокой категории семенного картофеля в период вегетации растений подтвердил надежное качество исходного материала, полученного на основе БЗСК.

Результаты исследований отражают преимущество применяемого метода отбора базовых клонов в полевом питомнике БЗСК с использованием многократного улучшающего отбора и ускоренного размножения оздоровленного исходного материала на основе БЗСК в культуре in vitro. Внедрение данного элемента технологии в семеноводство позволяет обеспечивать систематический мониторинг качества сортообразцов в полевых питомниках, в культуре in vitro и на первых этапах размножения семенного картофеля в оригинальном семеноводстве.

Использование микроспорофита в качестве единицы размножения

Потенциальные возможности вегетативного способа размножения клубней практически безграничны и лимитируются лишь факторами времени и возможностями материальной базы для процессов регенерации растений из частей клубня или побега, укоренения эксплантантов в субстрате и вегетации полученных организмов при формировании нового урожая.

Для изучения возможности укоренения непосредственно в субстрате элементов морфологии клубня, обладающих малой массой и размерами, нами были проведены опыты с апексами, протоспорофитами и микроспорофитами.

В качестве контроля использовали этиолированные ростки длиной 15-20 мм, у которых были сформированы корешки длиной 2-5 мм и более. Для получения апексов срезали верхушки этиолированных ростков длиной 4-5 мм и массой 0,03-0,09 г.

Протоспорофит получали посредством отчуждения зачатка бокового этиолированного побега с участком покровных тканей и основной паренхимы коры этиолированного побега предыдущего порядка. На протоспорофите отсутствовали корешки или корневые бугорки. Масса протоспорофита 0,05-0,2 г.

Микроспорофит получали так же, как и протоспорофит, однако в отличие от протоспорофита он имел 1-5 и более корешков длиной от 1 до 3 мм. Масса микроспорофита 0,09-0,3 г.

Анализируя качественные характеристики по- беговых фрагментов, представленных апексами и протоспорофитами, можно сказать, что они являют собой промежуточное звено между технологиями регенерации частей растений in vitro и укоренения ростковых микрофрагментов непосредственно в субстрате. Как исходный материал для культуры меристем они обладают слишком большими размерами (около 5 мм) и массой (0,05-0,2 г). Если же целью является размножение уже освобожденного от инфекции материала, то эффективность использования апексов и протоспорофитов слишком низка, так как их приживаемость непосредственно в субстрате (0,50,8%) не может быть признана достаточной для получения положительных конечных результатов. Попытки укоренения апексов и протоспорофитов показали, что длительность процесса формирования корневой системы превышает возможности поддержания их жизнеспособности. Недостаточное поступление влаги из субстрата приводит к увяданию, а затем высыханию тканей, что в итоге завершается их отмиранием. Увеличение же влажности воздуха создает гораздо большую опасность в связи с началом быстрого процесса побурения и загнивания паренхимных тканей стеблевой части апекса и протоспорофита.

Некоторые модификации микроспорофита обладают повышенной жизнеспособностью. При устойчивом функционировании даже одного корешка после высадки в субстрат у микроспорофита происходит быстрое формирование корневой системы. Анализ особенностей онтогенеза микроспорофитов показал, что после укоренения они обладали практически одинаковыми свойствами независимо от исходных данных (количества имеющихся корешков). Вместе с тем именно процесс укоренения качественно разделял исходные формы по их потенциальным возможностям.

Для ускоренного размножения возможно использование росткового микрофрагмента (микроспорофита), представляющего собой отделенный от этиолированного ростка зачаток бокового побега с участком покровных тканей и основной паренхимы коры этиолированного побега предыдущего порядка массой 0,09-0,3 г. Модификационный вариант микроспорофита с 5 и более корешками длиной от 1 до 3 мм обладает повышенной жизнеспособностью. За счет возможности получения большого количества микроспорофитов от одного материнского клубня коэффициент размножения превышает 1:300.

Ярусный способ размножения

Исследование проведено на опытном участке кафедры растениеводства ИСХПР НовГУ. Способ основан на стимуляции ветвления базовых ростков клубня картофеля до посадки с последующим увеличением зоны столоно- и клубнеобразования. Для подготовки клубней их апикальную часть надрезают и обрабатывают раствором тиомочевины. Проращива-

ние проводят в темноте при температуре 14-16°С и относительной влажности воздуха 90-95%. При формировании на базовых этиолированных ростках первого порядка 3-4 узлов проводят отчуждение апексов, что стимулирует ветвление побегов.

После посадки клубни присыпают перегнойной землей слоем 10 см, а по достижении высоты побегов 21-25 см над уровнем перегнойной земли побеги присыпают питательным субстратом разной плотности.

Подсыпку повторяют несколько раз по мере достижения высоты побегов 21-25 см над уровнем субстрата.

При подсыпке оставляют свободными над поверхностью субстрата вершины побегов длиной 1-5 см, а плотность субстрата уменьшают с каждой подсыпкой.

За счет многократного подсыпания субстрата происходит формирование клубней на вегетативных побегах растения, при этом коэффициент размножения в опытном варианте увеличивается до 30,9 против 21,7 на контроле.

Увеличение коэффициента размножения семенных клубней в производственных условиях за счет использования агротехнических приемов

Для увеличения коэффициента размножения на семенных участках применяют загущенную посадку клубней. Раннее удаление наземной массы способствует снижению инфицированности клубней, а также увеличивает удельный выход семенной фракции. За счет проведения сеникации можно в 1,6-1,7 раза увеличить количество клубней семенной фракции. В наших опытах с проведением предуборочной обработки максимальный эффект был получен с применением в качестве сениканта 30%-го раствора аммофоса (рис.2).

Существенно значимым показателем эффективности выращивания семенного картофеля является выход с гектара клубней семенной фракции не только в массе, но и в количественном выражении. Общее количество клубней, полученных на гектаре посадок, зависит от вида предуборочной обработки. Так, при проведении скашивания за 10 дней до уборки остановка в прибавлении массы привела к тому, что некоторые клубни достигли к моменту проведения обработки размеров и массы семенной фракции, в то время как на контроле рост их продолжался до параметров крупной (продовольственной) фракции.

В варианте с проведением обработки растений картофеля 30%-м настоем суперфосфата за 30 дней до уборки, а также при использовании в качестве се- никанта 30%-го раствора ЖКУ и 30%-го раствора аммофоса общее число клубней по сравнению с контролем возросло на 56,7-127,6 тыс. на одном гектаре. Некоторые зачатки клубней за счет интенсификации оттока пластических веществ из листьев и стеблей и вследствие этого быстрого роста увеличились в массе до параметров фракции мелких клубней (фуражной). По этой же причине часть клубней из фуражной фракции увеличила массу до фракции семенной.

Применение модульной технологии ускоренного размножения клубней картофеля при прочих равных условиях позволяет получить нужное количество посадочного материала в более короткие сроки и, следовательно, снизить уровень поражения клубней патогенами.

Анисимов Б.В. Качество семенного картофеля — на уровень мировых стандартов: Информ. бюл. М.: МСХ РФ, 2000. 20 с.

Шпаар Д., Иванюк В., Шуман П., Постиков А. и др. Картофель. Минск : ФУА информ, 1999. С.211-213.

Карманов С.Н., Коршунов В.П. Пути интенсификации картофелеводства. М., 1988. С.16-26.

Коршунов А.В., Анисимов Б.В. Семеноводство картофеля, контроль качества и сертификации / Россельхозака- демия, ВНИИКХ. М., 2003. 291 с.

Анисимов Б.В. Сортовые ресурсы и передовой опыт семеноводства картофеля. М.: Росинформагротех, 2000. 148 с.

Жукова М.И. Борьба с вирусными болезнями в Белоруссии // Защита и карантин растений. 1998. №6. С.19-20.

Муромцев Г.С. Биотехнология в растениеводстве // Селекция и семеноводство. 1990. №4. С.2-9.

Трофимец Л.Н., Анисимов Б.В., Меличенко Г.И. Развитие безвирусного семеноводства картофеля // Селекция и семеноводство. 1990. №4. С.44-49.

Поспиши П.Ф. Методы биотехнологии в растениеводстве // Междунар. агропром. журн. 1989. №3. С.91-95.

Коршунов А.В. Картофелеводство должно развиваться интенсивно // Картофель и овощи. 1997. №2. С.2-4.

Волкова Р.И., Бурова В.В., Курлович М.М. Технология производства элиты картофеля, оздоровленного методом апикальных меристем // Разработки и совершенствование методов селекции первичного семеноводства картофеля: Сб. науч. тр. ЛСХИ. Л., 1988. С.110-114.

Читайте также: