Искусственное разведение энтомофагов как метод управления популяциями вредителей
Обновлено: 05.10.2024
Ввоз и акклиматизация энтомофагов. Ввоз и акклиматизация энтомофагов осуществляются в целях борьбы с завезенными вредителями.
Установлено, что вместе с посадочным материалом из одной страны в другую нередко завозятся вредители без их паразитов или хищников. Попав в новую страну с благоприятными климатическими условиями и не встречая эффективных энтомофагов, которые бы ограничивали их численность, вредители начинают размножаться в большом количестве, в то время как на их родине этих видов встречается так мало, что они не причиняют заметного вреда. Это происходит потому, что там они активно уничтожаются энтомофагами. В таких случаях достаточно бывает переселить этих эффективных энтомофагов с родины вредителя в места его завоза, как в результате деятельности энтомофагов численность вредных насекомых в новых районах их распространения сразу падает.
В СССР достигнуты значительные успехи в применении биологического метода борьбы с вредителями путем ввоза и акклиматизации энтомофагов. В целях борьбы с кровяной тлей в 1926 и 1930 гг. ввезен паразит афелинус, который повсеместно хорошо акклиматизировался. В результате его деятельности размножение кровяной тли подавлено на площади около 50 тыс. га садов во всех районах ее распространения.
Для борьбы с червецом ицерией в 1931 г. на Черноморское побережье Кавказа ввезен хищный жук родолия. Он успешно акклиматизировался, что позволило ликвидировать все известные там очаги ицерии.
Для борьбы с червецом комстока в 1940 г. в Узбекистан ввезен паразит псевдафикус. Акклиматизация этого энтсмофага прошла успешно, результатом чего явилось повсеместное подавление очагов распространения вредителя. На Черноморское побережье Кавказа для борьбы с тутовой щитовкой в 1947 г. ввезен паразит проспалтелла берлези, который успешно акклиматизировался. Этот паразит используется во всех странах для борьбы с тутовой щитовкой.
В Аджарию в 1947 г. ввезен хищный жук линдорус для борьбы с щитовками на тунге и других культурах, который также успешно акклиматизировался.
Рассмотренный способ использования энтомофагов уже получил полное признание и, несомненно, имеет большие перспективы.
Искусственное разведение энтомофагов и выпуск их в естественные условия. Лабораторное разведение энтомофагов и выпуск их в естественные условия является необходимым потому, что некоторые весьма эффективные хищники и паразиты в местах размножения вредителей часто появляются в незначительном количестве. Их естественное размножение там сдерживается неблагоприятными для них климатическими или хозяйственными условиями. Нужно отметить, что неблагоприятные условия для них создаются лишь в определенный период года, после чего могут создаваться условия вполне благоприятные. Но вследствие массовой гибели энтомофагов в предшествующий период деятельность их оказывается мало ощутимой. Если же в начале появления того или иного вредителя выпускать на поля энтомофагов, размноженных предварительно в искусственных условиях, то их роль резко возрастает.
Поясним это таким примером. Бабочки первого поколения озимой совки в условиях лесостепной части Украины появляются в середине мая. Для откладки яиц они перелетают на участки пропашных культур, в частности сахарной свеклы. Трихограмма (паразит—яйцеед озимой совки) после перезимовки появляется в первых числах мая и заражает тогда яйца щитоноски, живущей на лебеде и вьюнке. На перепаханных участках, где отсутствуют указанные растения, трихограмма не встречается. Лишь новое поколение ее, появляющееся в самых последних числах мая, обнаруживается на посевах сахарной свеклы, где озимая совка откладывает яйца. Но в это время обычно уже прекращается массовая яйцекладка совки, и поэтому деятельность поздно появившейся трихограммы бывает мало эффективной. Если же на посевы свеклы выпустить искусственно выведенную трихограмму в начале яйцекладки совки, то можно достичь большого эффекта в уничтожении ее яиц.
Сходное положение отмечается в отношении теленомусов — паразитов яиц клопа-черепашки. Весной на озимых посевах, где появляется черепашка, теленомусы обычно встречаются в очень небольшом количестве. Это объясняется тем, что осенью они сосредоточиваются главным образом на участках пропашных культур (подсолнечник, кукуруза), на травах, в лесозащитных полосах, где и зимуют. Весной на посевах озимых их встречается мало, и поэтому они уничтожают незначительнее количество яиц черепашки. Искусственный же выпуск теленомусов на посевы хлебов в самом начале яйцекладки клопа-черепашки повышает процент уничтожения яиц этого вредителя.
В настоящее время способы лабораторного разведения энтомофагов разработаны лишь для немногих видов. На Украине в массе размножают трихограмму для борьбы с озимой совкой и другими вредителями, а также теленомусов длй борьбы с клопом-черепашкой.
В новых очагах вредителей специфические паразиты обычно также отсутствуют. Такое положение наблюдается в отношении непарного шелкопряда, который расселяется главным образом при помощи ветра, переносящего молодых гусениц на большие расстояния, а также кольчатого шелкопряда и других вредителей. Появляясь в новых очагах, где определенные виды энтомофагов еще отсутствуют, вредители при благоприятных климатических условиях быстро размножаются. В то же время размножение вредителей ослабляется, а иногда и совсем подавляется в тех местах, где встречаются эффективные в отношении данных видов паразиты.
Совершенно очевидно, что в подобных случаях целесообразно переселять паразитов в места, где они отсутствуют; это позволит в короткий срок подавить размножение вредителя.
Содействие естественному размножению энтомофагов. Этот способ основан на использовании агротехнических приемов для увеличения активности энтомофагов. Поясним это примером.
За счет конопляной блохи размножается эффективный паразит перилитус, который зимует в теле жуков. Зимующие в поверхностных слоях почвы жуки появляются рано, и вскоре из них выходят личинки паразита, которые в этот период в массе погибают. Жуки же, зимующие в более глубоких слоях почвы, куда они попадают в результате глубокой зяблевой пахоты, появляются весной на две-три недели позже, когда уже установится более теплая погода, и тогда выходящие из жуков паразиты сохраняются. Таким образом, глубокая осенняя перепашка конопляников способствует сохранению паразита конопляной блохи и является профилактической мерой борьбы с этим вредителем. Указанный прием имеет еще и то положительное значение, что задерживается срок появления перезимовавших жуков, конопля успевает развить большую листовую поверхность и поэтому лучше противостоит нападению блохи.
Для естественного размножения многим видам энтомофагов необходимо дополнительное питание нектаром цветов. Крупные наездники и тахины являются постоянными посетителями цветов различных растений. Необходимость цветущей растительности для размножения наездников и тахин давно отмечена в условиях лесного хозяйства. Травянистая цветущая растительность обеспечивает подкормку тахин и наездников и концентрацию их в лесных насаждениях, а это в конечном счете повышает их роль в ограничении размножения многих лесных вредителей. И наоборот, отсутствие травянистой растительности под пологом сосновых культур исключает возможность обитания там нуждающихся в дополнительном питании видов наездников и тахин, и в таких обедненных биоценозах многие вредители образуют очаги размножения. Важное значение имеет также кустарниковый подлесок, обеспечивающий размножение дополнительных хозяев многих видов паразитов. Поэтому создание подлеска, недопущение чрезмерного выпаса скота и проведение других мероприятий по обеспечению условий для постоянного обитания наездников и тахин в лесных насаждениях должны рассматриваться как мероприятия, направленные на защиту леса от вредителей.
Положительное значение для размножения паразитов вредителей в садах имеют садозащитные полосы. Они ослабляют силу ветров, затрудняющих деятельность мелких паразитов, а кроме того, в них размножаются безвредные для сада насекомые. Эти насекомые являются дополнительными хозяевами, за счет которых развиваются некоторые паразиты вредителей сада в тот период, когда основные хозяева паразитов — вредители сада — отсутствуют. При таких условиях в садах, окруженных садозащитными полосами, деятельность паразитов в ограничении размножения вредителей всегда будет, выше, чем в садах без садозащитных полос. Следовательно, создание садозащитных полос нужно рассматривать и как мероприятие по ограничении размножения вредителей сада.
На естественное размножение энтомофагов оказывает влияние также применение в борьбе с вредителями химических мероприятий. Вполне понятно, что инсектициды, в частности высокоэффективные органосинтетические препараты ДДТ и гексахлоран, губят не только вредителей, но и полезных насекомых. Поэтому сроки применения их имеют весьма важное значение. Исследованиями проф. В. Н. Старка установлено, что несвоевременная обработка леса препаратами ДДТ и гексахлорана приводит к снижению численности паразитов, вследствие чего численность ряда вредителей (майского хруща, дубовой филлоксеры, некоторых видов тлей, щитовок и растительноядных клещей) возрастает.
Из изложенного ясно, что биологический метод борьбы с вредителями может быть осуществлен не только путем акклиматизации или ежегодного выпуска энтомофагов, истребляющих вредителей, но и содействием их естественному размножению на основе соответствующих агроприемов и рационального проведения химической борьбы с вредителями.
Результаты применения биологического метода борьбы с вредными насекомыми проявляются в разные сроки; они зависят от способов использования энтомофагов.
Интродукция высокоэффективных энтомофагов позволяет подавлять массовое размножение вредителя обычно уже через один-два года. При ежегодном выпуске энтомофагов, размножаемых в искусственных условиях, эффект достигается в том же году. Положительный результат использования энтомофагов путем внутриареального переселения может проявиться через один-два года. При проведении мероприятий, содействующих естественному размножению природных энтомофагов, результат их деятельности может стать заметным иногда лишь через несколько лет.
Проявление эффективности энтомофагов определяется сроком накопления их численности до таких величин, когда станет возможным уничтожение значительного процента особей вредителя. Для получения соответствующего эффекта необходимо систематически проводить мероприятия, содействующие естественному размножению энтомофагов.
Если вы нашли ошибку, пожалуйста, выделите фрагмент текста и нажмите Ctrl+Enter.
Использование: сельское хозяйство, в частности биологическая защита растений путем использования энтомофагов для борьбы с вредителями растений. Сущность: предложен способ выращивания Pteromalus puparum , заражающих куколок вредных насекомых. В качестве хозяина наработки биоматериала рассматривается дубовый шелкопряд. Сформированные куколки дубового шелкопряда извлекают из оболочки кокона и предлагают для заражения их энтомофагом. 1 з. п. ф-лы, 6 табл.
Изобретение относится к области сельского хозяйства, в частности к разведению полезных насекомых, и может быть использовано при разведении энтомофагов вредителей сельскохозяйственных культур.
В практике биологической защиты растений от вредных насекомых известны способы выращивания энтомофагов в биолабораториях на яйцах и гусеницах насекомых-хозяев. Но выращенные этим способом энтомофаги не заражали вредителей на стадии куколок. Известна, периодически, сравнительно высокая эффективность природных энтомофагов, заражающих куколок фитофагов.
Однако массовое их выращивание в лабораториях не налажено. Для природных популяций паразитов создаются более приемлемые условия для функционирования, включающие такие трудоемкие процессы как подсев нектароносов, организация микрозаповедников, исключение обработок пестицидами. Однако этим нельзя достичь стабильной высокой эффективности природных энтомофагов, к тому же из-за функционирующих севооборотов овощные и другие однолетние культуры каждый год размещаются на других полях и посев нектароносов и другие меры необходимо осуществлять ежегодно.
Наиболее близким техническим решением является способ выращивания энтомофагов на куколках капустной и репной белянок, заключающийся в подкормке имаго паразита стимуляторами из класса силатранов: мивал, мигуген или изомигуген. Но при этом непокрытые оболочками куколки белянок быстро затвердевают и вследствие этого плохо заражаются энтомофагами.
Однако известный способ имеет следующие недостатки: в качестве хозяев куколочных паразитов используются белянки, вредители сельскохозяйственных культур, что связано с риском их потенциального вреда. Для белянок не разработан промышленный регламент массового лабораторного разведения; низкая эффективность заражения куколочных паразитов белянок, для увеличения которой используются стимуляторы, что усложняет и удорожает технологию выращивания; значительный расход стимуляторов, производство которых налажено только для медицинских целей; низкая продуктивность известного способа, ограниченная небольшой массой куколок белянок, вследствие чего в одной куколке развивается не более 50-70 особей паразита; отсутствие покрова оболочек, в которые заключены куколки белянок, способствует быстрому затвердеванию хитинового покрова, препятствующего заражению энтомофагами, а также значительному истреблению куколок хищниками.
Целью предложенного способа является повышение эффективности выращивания энтомофагов, заражающих куколок фитофагов, улучшение биологических показателей целевого продукта.
Поставленная цель достигается тем, что в способе выращивания энтомофагов, заражающих куколок фитофагов, в качестве насекомого-хозяина, где развиваются энтомофаги, используют дубовый шелкопряд в стадии куколки. Цель достигается также тем, что куколки извлекают из оболочек после взрезания ее в период спустя сутки после сформирования куколки и до возраста за сутки до вылета имаго из куколки. Сформировавшиеся куколки дубового шелкопряда, выращенных по общепринятой технологии извлекают из шелковых оболочек и предлагают для заражения энтомофагам, которые их заражают, развиваются, заканчивают онтогенез, вылетает имаго, которые можно использовать в полевых агроценозах или для заражения куколок дубового шелкопряда с целью накопления.
Сопоставительный анализ заявляемого решения с прототипом показывает, что заявляемый способ отличается от известного тем, что в качестве хозяина энтомофагов используют куколки дубового шелкопряда, выращиваемого для получения натуральной шелковой нити. Используемые куколки для осуществления изобретения побочный продукт, оставшиеся от получения основного (шелка). Использование куколок дубового шелкопряда в предложенном способе позволяет в биолабораториях массово выращивать энтомофаги, заражающие куколки вредителей и таким образом ввести в хозяйственный оборот новый вид.
Таким образом, заявляемый способ соответствует критерию изобретения "новизна". Известно техническое решение, в котором куколки белянок заражают энтомофагом с использованием стимуляторов. Однако использование его практически невозможно ввиду того, что не существует технологии массового лабораторного разведения белянок, кроме того, биологически они мало пригодны для этого из-за быстрого огрубления покрова куколок и даже использование стимуляторов мало повышает продуктивность способа.
Существенными отличиями предлагаемого способа от способа прототипа являются: исключение выращивания в лабораторных условиях белянок и листоверток, вредных насекомых естественных хозяев куколок паразитов; выращивание энтомофагов на куколках дубового шелкопряда, получаемые как побочный продукт после переработки шелкового сырья; исключение использованием химических соединений стимуляторов для подкормки имаго паразитов; куколки шелкопряда освобождаются от оболочки непосредственно перед заражением энтомофагами;
куколки дубового шелкопряда являются универсальным хозяином, на которых выращиваются энтомофаги овощных и плодовых культур.
Пример конкретного выполнения.
Для обоснования и экспериментального подтверждения способа использовались два наиболее распространенных и хозяйственно-важных энтомофага куколок: Pteromalus puparum L. заражающий в агроценозах куколок капустной и репной белянок вредителей овощных культур, в дальнейшем именуется Птеромал куколочный. Второй вид Pteromalus chrysos Walk. заражающий комплекс садовых листоверток: смородинную, розанную, кривоусую, именуемый в дальнейшем Птеромалюс хризос.
Предлагаемый способ выращивания энтомофагов реализован следующим образом. Экспериментально обоснованы оптимальные и граничные периоды в развитии куколок шелкопряда в способе, пригодные для заражения их энтомофагами. Для проведения экспериментов отбирали куколок дубового шелкопряда породы Полесский тассар, выращиваемого в культуре на Украине для получения натурального шелкового сырья, а также куколок капустной белянки и розанной листовертки. Выращивали дубовый шелкопряд по общепринятой технологии на листьях одного из растений: дуба, граба, бука, березы или ивы. Куколок белянки и листовертки собирали в природе. Из куколок этих фитофагов отбирали энтомофагов после их вылета. Энтомофагов идентифицировали и формировали варианты опытов.
П р и м е р 1. После формирования гусеницей дубового шелкопряда оболочки последнюю вскрывали и извлекали шелкопряд на стадии предкуколки. Использовали 30 предкуколок, которые размещали в широкогорлые пробирки, куда после спаривания переселяли самки энтомофагов. Каждой предкуколке подсаживали по 5 самок паразита. Инкубировали при оптимальных гидротермических условиях. Для сравнения энтомофаги разводили по способу-прототипу, на куколках капустной белянки и куколках розанной листовертки. Эксперимент проводился до естественной гибели энтомофагов. Эффективность способа оценивали по основным, общепринятым хозяйственным и биологическим показателям, сравнивая при этом с показателями способа-прототипа.
В табл. 1 представлены данные, характеризующие эффективность заражения шелкопряда на стадии предкуколки. Как видно, оба паразита заражали предкуколок шелкопряда, однако продуктивность по сравнению с прототипом была низкой, что свидетельствует о нецелесообразности выращивания энтомофагов на этой стадии шелкопряда.
П р и м е р 2. В экспериментах использовали по 50 куколок дубового шелкопряда, не позже 24 ч после их сформирования, а также куколки капустной белянки и розанной листовертки. Последние два вида использовали для разведения энтомофагов по способу-прототипу. На дубовом шелкопряде выращивали оба вида энтомофагов.
Из представленных в табл. 2 данных оба вида энтомофагов заражали куколки шелкопряда, давали плодовитое потомство и по всем сравниваемым показателям значительно превосходили способ-прототип. Особенно значимым было превышение по показателю количества особей паразита, которые развивались в одной куколке, где развивалось в 7-9 раз больше энтомофагов, чем в куколках белянки или листовертки. Первый день с начала формирования куколок шелкопряда является оптимальным сроком для выращивания в них энтомофагов.
П р и м е р 3. Заражение куколок шелкопряда проводили в середине куколочного развития (6-й день) с момента их образования. Условия экспериментов аналогичны предыдущим. Оценку эффективности способа делали после завершения онтогенеза энтомофагов. Результаты приведены в табл. 3.
Установлено, что куколки шелкопряда заражались энтомофагами. Потомство, выращенное по заявляемому способу по всем сравниваемым показателям, превосходило способ-прототип. Этот период также является оптимальным для заражения энтомофагами.
П р и м е р 4. Куколки шелкопряда за двое суток до вылета из них бабочек освобождали от оболочек и выращивали энтомофагов.
В табл. 4 представлены результаты экспериментов. Как видно, энтомофаги эффективно развивались на куколках шелкопряда по предлагаемому способу, что свидетельствует о том, что куколки шелкопряда за двое суток вылета из них бабочек пригодны для заражения и выращивания в них энтомофагов.
П р и м е р 5. За сутки до вылета бабочек из куколок шелкопряда на них выращивали энтомофаги. В табл. 5 представлены результаты экспериментов. Как видно по всем исследуемым параметрам, эффективность способа была низкой, что дает основание сделать вывод о неприемлемости заражения куколок за сутки до отрождения из них бабочек, энтомофагами. Следовательно, эффективными и оптимальными периодами в развитии куколок дубового шелкопряда для выращивания в них энтомофагов являются периоды, начиная с первого дня их образования, весь куколочный период включительно, вплоть за одни сутки до начала вылета из них бабочек.
П р и м е р 6. В полевом эксперименте, на посадках капусты оценивали эффективность птеромала куколочного, выращенного по предлагаемому способу для ограничения численности белянок на капусте. Выпуск энтомофага проводили против 2-го поколения белянок из расчета 10 тыс. особей на 1 га. Второй выпуск птеромала проводили спустя 14 дней после первого. Для сравнения использовали птеромала, выращенного по способу-прототипу. Результаты экспериментов представлены в табл. 6. Для выращивания 20 тыс. особей паразита понадобилось 45 куколок шелкопряда, тогда как для получения такого же количества энтомофагов, выращенных по способу-прототипу потребовалось 295 куколок белянок. Выращенные по предлагаемому способу энтомофаги намного эффективнее прототипа заражали куколок белянок, что в итого снизило их численность в 2,6 раза более эффективно, чем птеромал, выращенный по способу-прототипу.
1. СПОСОБ ВЫРАЩИВАНИЯ ЭНТОМОФАГОВ, включающий заражение энтомофагом куколок чешуекрылых, отличающийся тем, что для заражения используют куколки дубового шелкопряда.
2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что заражение проводят в период от 24 ч после сформирования куколки и за 24 ч до выхода имаго из куколки.
Предлагается способ разведения кокцинеллид на искусственных питательных средах, позволяющий упростить технологию и снизить себестоимость массового разведения энтомофагов без снижения биологических показателей, приведены данные по биологической эффективности энтомофагов, воспитанных на ИПС в отношении тлей и мучнистых червецов.
В разработанных искусственных питательных средах для кокцинеллид, расход естественного корма сокращен на 25-85%; сахарозы на 17-20%, аминокислот на 23-27%. Вместо казеина, в состав сред введены более дешевый и технологичный в приготовлении компонент – соевая мука. Вместо кукурузного и кокосового масел, введено пальмоядровое, имеющее более длительный срок хранения, что особенно важно в условиях микроклимата биолабораторий, среды обогащены витаминами В1; В6; В12.
В результате проведенных исследований установлено, что биологическая эффективность энтомофагов, воспитанных на ИПС, практически не отличается от биологической эффективности воспитанных на естественном корме.
Ключевые слова. Кокцинеллиды, тли, мучнистые червецы, искусственные питательные среды, биологические показатели, биологическая эффективность.
BREEDING TECHNOLOGY AND BIOLOGICAL EFFICIENCY OF ENTOMOPHAGES BROUGHT UP ON ARTIFICIAL NUTRICULTURE MEDIUM WITH RESPECT TO PESTS OF AGRICULTURAL CROPS
Bugaeva L.N. 1 , Slobodyanyuk G.A. 2 , Kashutina E.V. 3 , *, Yasyuk L.V. 4 , Ignatiev T.N. 5
1 ORCID: 0000-0002-2159-9652;
2 ORCID: 0000-0001-8113-3339;
3 ORCID: 0000-0002-6179-2019;
4 ORCID: 0000-0002-4589-8454;
5 ORCID: 0000-0002-0595-2882;
1, 2, 3, 4, 5 Lazarevskaya Experimental Plant Protection Station, Sochi, Russia
Abstract
A method for the cultivation of Coccinellidae on artificial nutriculture media (ANM) is proposed allowing the simplification of the technology and the reduction of the cost of mass breeding of entomophages without reducing biological indicators, whereas data on the biological efficiency of entomophages raised on ANM in relation to aphids and mealybugs are presented.
The consumption of natural feed is reduced by 25-85%; sucrose by 17-20%, amino acids by 23-27% in developed artificial nutriculture media for Coccinellidae. A cheaper and more technologically advanced component, soy flour, was introduced into the composition of the media instead of casein. Palm oil was introduced instead of corn and coconut oils with a longer shelf life, which is especially important in a microclimate bio-laboratory environment, the media enriched with vitamins B1; AT 6; AT 12.
As a result of the studies, it was found that the biological efficiency of entomophages raised on ANM does not differ from the biological efficiency of those raised on natural food.
Keywords: Coccinellidae, aphids, mealybugs, artificial nutriculture media (ANM), biological indicators, biological efficiency.
Разработка искусственных питательных сред для кокцинеллид ведется более 50 лет, однако созданные ИПС сложны по своему составу и не обеспечивают достаточно высоких показателей жизнеспособности и биологической эффективности лабораторных популяций [1, C.7].
В России работы по созданию ИПС для хищных кокцинеллид были начаты Б.М.Чумаковой (1962) [2, C.143]. Объектом исследований был выбран хищный жук криптолемус. В состав среды, предназначенной для выкармливания личинок, входило 19 элементов (углеводы, аминокислоты, витамины, жиры и др. вещества). На основе исходной была разработана полусинтетическая среда, давшая лучшие результаты. Основным недостатком предложенного корма является высокое содержание сухих мучнистых червецов, а также ее сложный состав.
Предложенные среды нельзя признать идеальным пищевым рационом, ввиду значительного содержания компонентов медицинского и продовольственного назначения и высокого содержания естественного корма.
На Лазаревской опытной станции разработан способ разведения кокцинеллид на усовершенствованных искусственных питательных средах, позволяющий упростить технологию и снизить себестоимость массового разведения энтомофагов без снижения биологических показателей.
Материалы и методы
Целью нашей работы являлось усовершенствование искусственных питательных сред путем сокращения компонентов медицинского и продовольственного назначения и частичной замены животных белков растительными.
Объектом исследований служили энтомофаги семейства Cociniellidae – Cryptolaemus montrouzieri Muls. и Harmonia axyridis Рall.
Cryptolaemus montrouzieri Muls. – тропический вид, завезенный из Египта, широко применяется для биологической защиты от червецов и пульвинарий на чайных плантациях, виноградниках и оранжереях.
Harmonia axyridis Рall. – вид, распространенный на Дальнем востоке, отличается высокой прожорливостью и репродуктивной способностью. Широко используется для защиты растений от тлей, особенно в защищенном грунте.
При разведении кокцинеллид, личинок содержат в универсальных садках, (патент РФ 103442), по 500 особей в каждом. Дно садка выстилается фильтровальной бумагой. Корм предлагается в виде брусочков размером 2х2х1 см. на кальке или стерильной полиэтиленовой пленке. Для окукливания личинок в садки помещают отрезки гофрированной бумаги или бумажные капсулы. Для яйцекладки имаго хармонии предлагается темная гофрированная бумага, криптолемуса овисаки червецов. Для воспитания 1000 личинок кокцинеллид требуется 500-600 г. питательной среды (патент РФ 2485770; патент РФ 2520860).
Прожорливость личинок хармонии на естественном корме определяли индивидуально. В энтомологическую пробирку помещали одну личинку, и фиксированное количество тлей – 15;30 для личинок младших возрастов и 50;80;100;120 для личинок старших возрастов. Ежедневно учитывали количество съеденных тлей.
Результаты и обсуждение
Искусственные питательные среды готовятся путем дозирования и смешивания компонентов в определенной последовательности.[3, C.5;4, C.5]. Опытным путем установлено, что предлагаемый рецептурный состав питательных сред, используемый для воспитания кокцинеллид, не ухудшает их биологических показателей.
Так, при воспитании криптолемуса на ИПС полный цикл развития от яйца до имаго составил 29,5 дней, вылет имаго – 85%, средний вес жуков – 12,8 грамма. При воспитании на естественном корме (виноградный мучнистый червец) эти показатели составили соответственно 28,4; 90% и 13,2 грамма.
При воспитании хармонии на ИПС развитие преимагинальной стадии составило 15,6 дней, вылет имаго-70%. При воспитании на злаковой тле соответственно 14,2 дней; 80%. При дальнейшем содержании жуков на ИПС продолжительность их жизни составила более двух месяцев. [9, C.153-157].
Таблица 1 – Суточная прожорливость личинок Harmonia axyridis Pall., полученных от жуков воспитанных на ИПС
| Плотность тлей | Среднее количество съеденных тлей | ||||
| Возраст личинок | |||||
| L1 | L2 | L3 | L4 | ||
| 15 | 4.8 | 8.2 | – | – | |
| 30 | 6.2 | 10.0 | – | – | |
| 50 | 6.4 | 10.8 | 42.6 | 48.4 | |
| 80 | – | – | 50.2 | 73.8 | |
| 100 | – | – | 52.4 | 78.6 | |
| 120 | – | – | 58.4 | 80.2 | |
| Контроль | 6.0 | 12.2 | 62.4 | 82.8 | |
По плодовитости жуки H. аxyridis, воспитанные на ИПС, незначительно отличаются от воспитанных на тле. После перевода имаго на естественный корм, на четвертые сутки дали первую яйцекладку. Количество яиц отложенных одной самкой за сутки составило в среднем 54,9 шт. При воспитании на тле плодовитость 1 самки составила 60,2 шт. (табл.2)
Таблица 2 – Плодовитость жуков Harmonia axyridis Pall.,воспитанных на ИПС
| Повторность | Количество яиц, отложенных за 1 сутки | ||||||||
| Дата учета | |||||||||
| 25.03 | 26.03 | 27.03 | 28.03 | 29.03 | 30.03 | 31.03 | Всего | Среднее | |
| 1 | 70,0 | 43,0 | 44,0 | 76,0 | 80,0 | 60,0 | 65,0 | 438,0 | 62,5 |
| 2 | 38,0 | 35,0 | 20,0 | 61,0 | 59,0 | 37,0 | 38,0 | 288,0 | 41,1 |
| 3 | 42,0 | 85,0 | 50,0 | 70,0 | 62,0 | 38,0 | 32,0 | 379,0 | 54,1 |
| 4 | 27,0 | 25,0 | 30,0 | 43,0 | 50,0 | 28,0 | 30.0 | 233,0 | 33,2 |
| 5 | 47,0 | 66,0 | 69,0 | 73,0 | 92,0 | 80,0 | 54,0 | 481,0 | 68,7 |
| 6 | 28,0 | 74,0 | 80,0 | 36,0 | 85,0 | 60,0 | 59,0 | 422,0 | 60,2 |
| 7 | 50,0 | 60,0 | 92,0 | 74,0 | 80,0 | 58,0 | 30,0 | 444,0 | 63,4 |
| 8 | 42,0 | 84,0 | 60,0 | 72,0 | 38,0 | 52,0 | 42,0 | 390,0 | 55,7 |
| 9 | 43,0 | 57,0 | 44,0 | 88,0 | 75,0 | 50,0 | 52,0 | 408,0 | 58,2 |
| 10 | 78,0 | 46,0 | 40,0 | 72,0 | 70,0 | 62,0 | 42,0 | 410,0 | 58,5 |
| Среднее | 46,5 | 57,5 | 52,9 | 66,5 | 69,1 | 52,5 | 46,0 | 389,3 | 55,6 |
| Ошибка | 4,19 | 5,19 | 4,77 | 6,00 | 6,23 | 4,74 | 3,69 | 35,11 | 5,01 |
| Контроль | 80,0 | 24,0 | 45,0 | 82,0 | 49,0 | 74,0 | 68,0 | 422,0 | 60,2 |
В полевых условиях изучалась эффективность личинок хармонии в отношении бахчевой тли на культуре огурца и эффективность личинок криптолемуса, в отношении виноградного мучнистого червеца, воспитанных на ИПС.
В результате двухлетних исследований, установлено, что личинки энтомофагов Cryptolaemus montrouzieri Muls. и Harmonia axyridis Рall., воспитанные на искусственных питательных средах, по биологической эффективности не отличались от воспитанных на естественном корме.
При выпуске личинок криптолемуса 2-3 возраста на растения винограда, зараженного мучнистым червецом, в соотношении хищник: жертва 1:50, биологическая эффективность составила от 70,0 до76,3%, при использовании личинок, воспитанных на естественном корме – мучнистом червеце, 72-78% (табл.3).
Таблица 3 – Биологическая эффективность Cryptolaemus montrouzieri Muls., в отношении мучнистых червецов
Биологическая эффективность личинок хармонии изучалась в закрытом грунте на растениях огурца, зараженных бахчевой тлей (10. с.296-300).
При выпуске личинок, воспитанных на ИПС, в соотношении хищник: жертва 1:40 эффективность их составила 76,3%; при соотношении 1:30 – 80,9%.
В контроле, при использовании личинок, воспитанных на злаковой тле, в таких же соотношениях, эффективность их составила соответственно 77,4%; 82.4%. (табл.4).
Таблица 4 – Биологическая эффективность Harmonia axyridis Рall., воспитанной на искусственной питательной среде
Люди постоянно ищут более эффективные и более безопасные средства защиты растений. Одним из направлений исследований стали биологические методы борьбы с вредителями.
Биологические методы как правило используются в составе интегрированных комплексов мер по получению урожая требуемого качества и объёма. Суть многих из этих методов заключается в использовании природных врагов сельскохозяйственных вредителей - этомофагов. Так называют различных животных, насекомых или даже микроорганизмы, которые питаются или уничтожают вредителей культурных растений. Данные методы не приводят к полному уничтожению вредителя, но снижают наносимый ущерб до приемлемых величин. Эффект от использования биологических методов как правило заключается в сокращении затрат на использование пестицидов и в получении более экологически чистой продукции. Наибольшее практическое применение получили три метода применения энтомофагов.
- Выращивание энтомофагов в искусственных условиях созданных человеком с последующим их распределением по полям требующим очистки
- Создание благоприятных условий для природных энтомофагов по месту произрастания культурных растений.
- Изготовление микробиологических препаратов.
Выращивание энтомофагов в искусственных условиях созданных человеком с последующим их распределением по полям требующим очистки
Метод распространения трихограмм довольно прост. Большинство биофабрик выпускает трихограмм в виде пакетов с яйцами зерновой моли, заражёнными этим насекомым. Такой пакет обычно содержит до пятидесяти тысяч особей и его хранят в холодильнике, чтобы трихограммы не разлетелись преждевременно. За 1-2 дня перед выпуском пакет помещают в тёплое место, чтобы взрослые насекомые начали откладывать яйца. Для выпуска используют простейшее устройство – пол-литровую банку с насыпанной внутрь мелко порезанной бумагой (1-2 см) и содержимым пакетов, банку накрывают марлей и выставляют на заражённые посевы. Каждая банка должна приходиться не более чем на 200 квадратных метров поля.
Норма выпуска трихограмм зависит от средней численности яиц вредителей на обрабатываемом поле. Рекомендуют при средней заражённости в 100 яиц на квадратный метр выпускать 50 тысяч насекомых на каждый гектар, уменьшая или увеличивая расход в зависимости от фактических подсчётов количества вредителей.
В последнее время разработаны методы механизированного распределения трихограмм по полю: разбрызгивание заражённых яиц с водой или мокрыми опилками, разбрасывание бумажных капсул с расфасованными в них трихограммами.
Трихограммы активно поражают большинство насекомых вредителей, но существуют мешающие эффективному применения метода факторы. Активность искусственно разведённой трихограммы значительно ниже чем у природной – приходится проводить наводнение несколько раз за время яйцекладки вредителя. При малой плотности вредителя насекомым не удаётся найти его яйца и они гибнут так и не уничтожив их. При отсутствии вредителей откладывающих яйца популяция трихограмм быстро сокращается. Также это насекомое чувствительно к внесению пестицидов, их применение быстро уничтожает всю популяцию.
В попытках размножать других энтомофагов насекомых не дали положителного эффекта, хотя их существует большое количество видов.
Кроме искусственного разведения проводились работы по сбору энтомофагов в естественных условиях и перевозке их на поля культурных растений. Положительного результата удалось добиться только для отдельных видов вредителей завезённых из других стран, естественные враги которых отсутствуют в нашей стране. Так удачными стали опыты борьбы с кровяной тлей, её паразит афелинус успешно акклиматизируется. Большое сожаление вызывает провал всех попыток завести к нам энтомофагов колорадского жука.
Создание благоприятных условий для энтомофагов по месту произрастания культурных растений
Не обязательно перемещать энтомофагов, можно создать для них благоприятные условия, тогда они самостоятельно и постоянно будут уничтожать вредителей. Большая популяция насекомых энтомофагов снижает количество вредителей до значений не влияющих на показатели урожая.
В природе живёт огромное количество полезных насекомых. Часть из них хищники – они охотятся и убивают вредителей, другая часть паразиты – они живут или питаются в теле вредителя. Подавляющая часть энтомофагов принадлежат к отрядам перепончатокрылых и сетчатокрылых, также они есть среди пауков и клещей. Хищные насекомые как правило уничтожают широкий спектр вредителей, особенно эффективны среди них жужелицы, божьи коровки, муравьи и пауки, в то же время паразиты ограничиваются несколькими близкими видами.
Первым шагом по созданию благоприятных условий для энтомофагов будут средства защиты их от пестицидов. Химическая обработка растений производится несколько раз в год и каждый раз сопровождается гибелью значительной части насекомых. Чем чаще проводить обработки тем меньше остаётся энтомофагов. Получается, что при частой обработке пестицидами уничтожаются естественные враги вредителей, и чтобы сохранить урожай бывает необходимо ещё чаще обрабатывать посевы. Следует очень внимательно следить, чтобы обработка производилась только когда она нужна, строго соблюдалась концентрация и используемые методы обработки сохраняли наибольшее число энтомофагов.
Для увеличения численности полезных насекомых рекомендуют по краям участка с требующим защиты культурным растением высевать растения. Данная мера обеспечивает повышение активности энтомофагов, особенно если нектароносы подобраны так что они цветут в течении всего периода защиты. Часть энтомофагов хорошо летает (журчалки, тахины и другие) и может передвигаться на большие расстояния для их питания стоит размещать посевы нектароносов равномерно по территории хозяйства. Самыми лучшими нектароносами для энтомофагов признаны: гречиха, горчица, подсолнечник, семенники овощей, тмин, вика и другие. В монокультурных хозяйствах количество энтомофагов критически снижается ниже природной нормы, также плохая ситуация в областях где нет цветущих во второй половине лета культур.
Изготовление микробиологических препаратов
В естественной среде вредители могут погибать от грибковых, бактериальных или вирусных заболеваний. Но как правило так гибнет лишь небольшое их число несильно влияя на общую популяцию вредителя. Для увеличения количества погибших от болезней разрабатывают и применяют специальные микробиологические препараты, вносимые промышленным способом
Перечислим наиболее известные препараты.
Боверин. Под его воздействием у насекомых развивается грибковое заболевание мускардиоз – грибница прорастает в теле поражённого объекта. Препарат для промышленного применения представляет собой смесь спор гриба белая мускардина и каолина, выглядит как белый порошок каждый грамм которого содержит 2 миллиарда спор. Его норма расхода 2 килограмма на гектар. Вносится в виде раствора в воде.
Энтобактерин. Имеет аналогичную боверину промышленную форму содержащую 30 миллиардов спор Bacillus thuringiensis и столько же кристаллов эндотоксина в каждом грамме. Норма расхода чуть больше 2-3 килограмма. Рекомендуют проводить 1-2 обработки на каждое поколение вредителя.
Дендробациллин. Форма и титр совпадают с энтобактерином, действующий микроорганизм Bacillus thuringiensis – dendrolimeus. Применение аналогично, расход 1-2 кг/га.
Битоксибациллин. Промышленная форма порок с прилипателем. Содержит 45 миллиардов спор Bacillus thuringiensis var. thiringiensis. Предполагается проведение трёх обработок с периодом 10-12 дней, при норме расхода 2 кг/га.
Бактородениид. Содержит не менее 1 миллиарда возбудителя тифа грызунов в каждом грамме. Применяется не позже 8 дней перед уборкой, с нормой 1-2 кг/га. Промышленная форма зерновая приманка.
Читайте также: