Первичный посев мокроты при подозрении на пневмококковую пневмонию предпочтительнее осуществлять на

Обновлено: 05.10.2024

1. Биологический метод применяется для диагностики:

а) пневмококковой пневмонии;

2. Основными представителями резидентной микрофлоры верхних дыхательных путей являются:

3. При пневмококковой пневмонии исследованию подлежат:

а) мазок из зева;

4. Первичный посев мокроты при подозрении на пневмококковую пневмонию предпочтительнее осуществлять на:

а) среду Борде-Жангу;

б) среду Клауберга;

в) среду Левенштейна-Йенсена;

г) сывороточноый агар с ристомицином;

д) кровяной агар.

5. Для возбудителя дифтерии характерно:

б) наличие капсул;

в) взаиморасположение клеток под углом друг к другу;

г) наличие зерен валютина.

6. Микроорганизмы рода Corynebacterium являются:

а) грамположительными палочками;

б) грамотрицательными палочками;

в) грамположительными кокками;

г) грамотрицательными кокками.

7. Основным фактором патогенности Corynebacterium diphteriae является:

в) ЛПС клеточной стенки;

8. Возбудитель дифтерии обладает:

а) уреазной активностью;

б) токсикогенными свойствами;

в) цистиназной активностью;

г) гемолитической активностью;

д) способностью восстанавливать нитраты в нитриты.

9. При лабораторной диагностике дифтерии:

а) материал перед исследованием обрабатывают кислотой, для устранения сопутствующей флоры;

б) материал отбирают до начала антибактериальной терапии;

в) материал до посева следует транспортировать и хранить при температуре 37 °С;

г) материал предварительно центрифугируют.

10. Для первичного посева коринебактерий дифтерии используют:

а) среду Борде-Жангу;

б) среду Клауберга;

в) среду Левенштейна- Йенсена;

г) сывороточный агар с ристомицином;

д) кровяной агар.

11. В состав среды Клауберга входят следующие компоненты:

б) теллурит калия;

в) суспензия свежих яиц;

12. Для первичного посева менингококков используют:

а) среду Борде-Жангу;

б) среду Клауберга;

в) среду Левенштейна-Йенсена;

г) сывороточный агар с ристомицином;

д) кровяной агар.

13. Для выявления возбудителя дифтерии в мазке можно использовать окраску:

в) по Цилю-Нильсену;

14. Для специфической терапии дифтерии используют:

а) противодифтерийную антитоксическую сыворотку;

б) дифтерийный анатоксин;

15. Для заблаговременной специфической профилактики дифтерии применяют:

16. Для идентификации C.diphtheria используются признаки:

17. Токсигенность дифтерии определяют с помощью:

а) реакции преципитации в агаре;

б) реакции нейтрализации антител;

в) реакции агглютинации.

18. Для дифтерийного токсина характерно:

а) его образование кодирует tox + ;

б) токсин состоит из двух компонентов;

в) оказывает блокирующее действие на синтез белка;

г) является эндотоксином.

19. В состав среды Левенштейна-Йенсена входят следующие компоненты:

б) теллурит калия;

в) суспензия свежих яиц;

20. После перенесенной скарлатины у человека формируется:

а) стойкий напряженный антимикробный иммунитет;

б) непродолжительный антимикробный иммунитет;

в) стойкий напряженный антитоксический иммунитет;

г) непродолжительный антитоксический иммунитет.

21. В состав среды Борде-Жангу входят следующие компоненты:

б) теллурит калия;

в) суспензия свежих яиц;

22. Проба Дика используется для выявления:

а) антимикробного иммунитета при стрептококковых инфекциях;

б) сенсибилизации к стрептококкам при ревматизме;

в) антитоксического иммунитета при скарлатине.

23. Основным методом лабораторной диагностики коклюша является:

24. Для Вordetella pertussis характерны следующие признаки:

б) рост на простом агаре;

в) образование пигмента;

г) расщепление мочевины;

д) наличие каталазы.

25. Для Вordetella parapertussis характерны следующие признаки:

б) рост на простом агаре;

в) образование пигмента;

г) расщепление мочевины;

д) наличие каталазы.

26. Для Вordetella bronchiseptica характерны следующие признаки:

б) рост на простом агаре;

в) наличие пигмента;

г) расщепление мочевины;

д) наличие каталазы.

27. После перенесенного коклюша формируется:

а) стойкий напряженный антимикробный иммунитет;

б) непродолжительный антимикробный иммунитет;

в) стойкий напряженный антитоксический иммунитет;

г) непродолжительный антитоксический иммунитет.

28. Специфическими (видовыми) антигенами Вordetella parapertussis являются:

29. Специфическими (видовыми) антигенами являются Вordetella pertussis:

30. Взятие исследуемого материала (слизи из верхних дыхательных путей) при подозрении на коклюш проводится:

а) заднеглоточным тампоном;

б) носоглоточным тампоном;

г) смыва из полости рта.

31. Специфическими (видовыми) антигенами Вordetella bronchiseptica являются:

32. Общими антигенами для всех представителей рода Вordetella являются:

33. В какой из клинических стадий коклюш наиболее заразен:

а) катаральная стадия;

б) пароксизмальная стадия;

в) стадия инкубации;

г) стадия выздоровления?

34. Для выделения Вordetella pertussis используют питательные среды:

а) среду Борде-Жангу;

б) среду Клауберга;

в) среду Левенштейна-Йенсена;

г) сывороточный агар с ристомицином;

д) кровяной агар.

35. Для заблаговременной специфической профилактики коклюша применяют:

36. Для Neisseria meningitidis. характерны следующие факторы патогенности:

37. Для всех представителей рода Neisseria характерны следующие признаки:

а) отрицательная окраска по Граму;

б) отсутствие подвижности;

в) имеют шаровидную форму;

г) имеют палочковидную форму;

д) являются аэробами;

е) не требовательны к питательным средам.

38. Взятие исследуемого материала (слизи из верхних дыхательных путей) при подозрении на менингококковый назофарингит проводится:

а) заднеглоточным тампоном;

б) носоглоточным тампоном;

г) методом смыва из полости рта.

39. Для экспресс-диагностики менингококковой инфекции применяют:

а) реакции агглютинации на стекле;

в) реакции преципитации;

г) методы встречного иммуноэлектрофореза.

40. Для дифференциации менингококка от других представителей рода Neisseria применяют следующие тесты:

а) ферментация углеводов;

б) образование индола;

в) способность образовывать полисахарид на агаре с 5 % раствором сахарозы;

г) отсутствие роста на бессывороточном агаре при 37 °С.

41. Для серодиагностики менингококковой инфекции применяют:

а) реакции агглютинации на стекле;

в) реакции преципитации;

г) методы встречного иммуноэлектрофореза.

42. Идентификацию Neisseria meningitides проводят на основании следующих свойств:

а) ферментация глюкозы;

б) наличие пигмента;

в) уреазная активность;

г) тест на каталазу.

43. Причиной пятнистой сыпи и петехиальных геморрагий при генерализованных формах менингококковых заболеваний являются:

а) капсулярные полисахариды;

б) белковый экзотоксин;

г) протеины наружной мембраны.

44. При лабораторной диагностике менингококковой инфекции:

а) материал перед исследованием обрабатывают кислотой для устранения сопутствующей флоры;

б) материал предварительно прогревают для устранения сопутствующей флоры;

в) материал до посева следует транспортировать и хранить при температуре 37 °С;

г) предварительно центрифугируют.

45. Для специфической профилактики менингита можно применять:

б) менингококковую вакцину;

в) менингококковый диагностикум;

46. К нозологическими формам менингококковой инфекции относятся:

47. Для заблаговременной специфической профилактики туберкулеза применяют:

48. Микобактерии не могут вызывать у человека:

49. Для выделения чистой культуры возбудителя туберкулеза необходимо:

50. Основным методом лабораторной диагностики туберкулеза является:

51. Туберкулез у человека могут вызывать:

а) М. tuberculosis;

52. Для представителей рода Mycobacterium характерны следующие признаки:

а) являются грамположительными микроорганизмами;

б) являются грамотрицательными микроорганизмами;

в) являются кислотоустойчивыми микроорганизмами;

г) образуют споры;

д) имеют капсулу.

53. Диагноз туберкулеза можно поставить:

а) на основании выделения чистой культуры;

б) с помощью серологических методов;

в) при микроскопии патологического материала.

54. Микобактерии растут:

а) быстро на любых питательных средах;

б) медленно на любых питательных средах;

в) быстро на специальных средах для микобактерий;

г) медленно на специальных средах для микобактерий.

55. Из перечисленных ниже микроорганизмов наименьшей устойчивостью во внешней среде обладают:

56. При лабораторной диагностике туберкулеза выполняют следующие требования:

а) обработка материала перед исследованием кислотой, для устранения сопутствующей флоры;

б) прогревание материала для устранения сопутствующей флоры;

в) материал до посева следует транспортировать и хранить при температуре 37 °С;

г) материал предварительно центрифугируют.

57. Проба Манту используется для:

а) диагностики туберкулеза;

б) диагностики дифтерии;

в) отбора лиц, подлежащих вакцинации вакциной БЦЖ;

г) отбора лиц, подлежащих вакцинации вакциной АКДС.

58. Для лечения туберкулеза используются:

а) антибиотики и химиопрепараты;

в) лечебные сыворотки;

59. В клинической практике для диагностики проказы используют:

а) бактериологический метод;

б) бактериоскопический метод;

в) биологический метод.

60. Для выявления возбудителя туберкулеза в мазке мокроты с помощью светового микроскопа можно использовать окраску:

а) по Цилю-Нильсену;

61. Для дифференциации Mycobacterium tuberculosis от других микобактерий применяют:

а) выделение сероводорода;

б) ферментация глюкозы;

в) метод микрокультур Прайса;

г) образование ниацина;

д) окраска по Цилю-Нильсену.

62. Укажите верные положения применительно к туберкулиновой пробе:

а) пробу считают положительной при появлении папулы, превышающей 10 мм;

б) наибольшее распространение нашло внутрикожное введение туберкулина (реакция Манту);

в) повторное введение туберкулина способно вызвать конверсию отрицательной пробы в положительную;

г) отрицательный ответ не следует рассматривать как факт, указывающий на отсутствие туберкулезного процесса;

д) проба имеет больше эпидемиологическое, чем диагностическое значение.

63. Для лечения лепры используются:

а) антибиотики и химиопрепараты;

64. Микобактерии туберкулеза являются:

г) факультативными анаэробами;

65. Возбудители туберкулеза:

а) образуют споры;

б) склонны к полиморфизму;

в) лишены пептидогликана;

г) образуют эндоспоры;

д) отличаются повышенной скоростью размножения.

66. Укажите питательные среды для культивирования микобактерий туберкулеза:

а) желточно-солевой агар;

б) мясо-пептонный агар;

г) шоколадный агар;

д) среда Левинштейна–Йенсена.

67. Проба Мицуды используется для:

а) диагностики лепры;

б) диагностики туберкулеза;

в) отбора лиц, подлежащих вакцинации вакциной БЦЖ;

г) для характеристики клинического течения лепры.

68. Для Mycobacterium leprae характерны следующие признаки:

4.2. МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ. БИОЛОГИЧЕСКИЕ И МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ

Лабораторная диагностика внебольничной пневмонии пневмококковой этиологии

1. Разработаны Федеральной службой по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Ю.В.Демина), ГБОУ ВПО ПГМУ им.ак.Е.А.Вагнера Минздрава России (И.В.Фельдблюм, Ю.А.Захарова, В.В.Николенко, Н.Н.Воробьева, С.О.Голоднова, А.В.Климашина), МБУЗ "Городская клиническая больница N 8" г.Челябинска (О.А.Орлова), ФБУН "Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии" Роспотребнадзора (В.В.Малеев, Г.А.Шипулин, С.Б.Яцышина, К.О.Миронов), "Научно-исследовательский институт антимикробной химиотерапии" ГБОУ ВПО "Смоленская ГМА" Минздрава России (Р.С.Козлов, С.А.Рачина), ФГБУ "Научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им.Н.Ф.Гамалея" Минздрава России (И.С.Тартаковский), ФГБУЗ "Научно-исследовательский институт детских инфекций" ФМБА России (С.В.Сидоренко, В.В.Гостев, М.О.Волкова).

2. Утверждены и введены в действие Руководителем Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации А.Ю.Поповой 20 октября 2016 г.

3. Введены впервые.

1. Область применения

1.1. Настоящие методические рекомендации (далее - МР) определяют порядок лабораторной диагностики заболеваний, в первую очередь пневмоний пневмококковой этиологии.

1.2. Методические рекомендации предназначены для специалистов организаций, осуществляющих лабораторную диагностику заболеваний органов дыхания, индикацию патогенов инфекций верхних и нижних дыхательных путей.

2. Термины и сокращения

БАЛ - бронхоальвеолярный лаваж

ВКО - внутренний контрольный образец

ВОЗ - всемирная организация здравоохранения

ВП - внебольничная пневмония

ГЭ/мл - количество геном-эквивалентов в 1 миллилитре

ДНК - дезоксирибонуклеиновая кислота

ИХА - иммунохроматографический анализ

КОЕ/мл - колониеобразующие единицы в 1 миллилитре

МО - медицинская организация

МПК - минимальная подавляющая концентрация

МУ - методические указания

- никотинамидадениндинуклеотид

OК - отрицательный контроль экстракции

ОРВИ - острая респираторная вирусная инфекция

ОРИТ - отделение реанимации и интенсивной терапии

ПК - положительный контроль экстракции

ПЦР - полимеразная цепная реакция

СМЖ - спинномозговая жидкость

СП - санитарно-эпидемиологические правила

УФ-бокс - ультрафиолетовый бокс

ФКР - Федеральные клинические рекомендации

ЭДТА - этилендиаминтетрауксусная кислота

CNA-aгap - селективный агар для выделения грамположительных бактерий с налидиксовой кислотой и колимицином

EUCAST - European on Antimicrobial Susceptibility Testing (Европейская система тестирования антимикробной восприимчивости)

3. Общие положения

Пневмонии - группа различных по этиологии, патогенезу, морфологической характеристике острых инфекционных заболеваний, характеризующихся поражением легких с обязательным наличием внутриальвеолярной экссудации, сопровождающихся симптомами патологии нижних отделов дыхательных путей (лихорадка, кашель, выделение мокроты, возможно гнойной, боль в грудной клетке, одышка) и рентгенологическими признаками "свежих" очагово-инфильтративных изменений в легких при отсутствии очевидной диагностической альтернативы. Внебольничной пневмонией считают заболевание, возникшее во внебольничных условиях (вне стационара или позднее 4 недель после выписки из него) или диагностируемое в первые 48 часов с момента госпитализации, а также развивающееся у пациента, не находившегося в домах сестринского ухода длительного медицинского наблюдения более 14 суток.

По данным федерального статистического наблюдения (форма N 2 "Сведения об инфекционных и паразитарных заболеваниях"), за 2011-2014 гг. заболеваемость ВП в России находилась на уровне 310-380 на 100 тыс. населения (600-750 случаев на 100 тыс. детей в возрасте до 14 лет).

У отдельных категорий граждан, в частности у военнослужащих срочной службы, медицинских работников, заболеваемость пневмококковыми пневмониями превышает уровень заболеваемости среди населения в целом.

Показатель смертности при ВП в 2011-2014 гг. составлял 2,9-3,9 на 100 тыс. населения (у детей в возрасте до 14 лет - 0,3-0,4 на 100 тыс.). В структуре младенческой смертности заболевания органов дыхания стоят на третьем месте (около 7%), из них около 74% приходится на пневмонии.

Этиологическая структура ВП может различаться в зависимости от возраста пациентов, тяжести заболевания и наличия сопутствующей патологии. По зарубежным данным, пневмококковые пневмонии диагностируют у 5% взрослых амбулаторных пациентов, 17,3% госпитализированных в терапевтические отделения и 21% - в отделения интенсивной терапии. В Российской Федерации по расчетным данным частота пневмококковых пневмоний у детей в возрасте от 1 месяца до 15 лет составляет 490 случаев на 100000 детского населения соответствующего возраста, в возрасте от 1 месяца до 4 лет - 1060 случаев.

Дети первых лет жизни являются основными источниками пневмококковой инфекции, заражая окружающих взрослых. Так, при средней частоте носительства у взрослых в 5-7%, среди взрослых, проживающих с детьми, она может достигать 30%.

По данным отчетной формы государственного статистического наблюдения в России (ф-2), пневмококковая этиология ВП подтверждается лишь в 1,3% случаев.

Создавшаяся ситуация требует поиска новых диагностических подходов и разработки алгоритмов выявления S. pneumoniae, включая стандартизацию бактериологических и серологических тестов, внедрение в работу практической медицины современных молекулярно-биологических и иммунохроматографических способов детекции возбудителя.

4. Биологические свойства Streptococcus pneumoniae, общая характеристика методов лабораторной диагностики

Возбудитель пневмококковой пневмонии, S. pneumoniae или пневмококк, входит в состав семейства Streptococcaceae, род Streptococcus, как вид условно-патогенных бактерий. Пневмококки - грамположительные каталазо- и оксидазоотрицательные мелкие шаровидные бактерии (кокки), являющиеся факультативными анаэробами.

При микроскопии часто имеют ланцетовидную форму, располагаются парами (диплококк), нередко имеют капсулу. Из жидких питательных сред под микроскопом визуализируются цепочками средней длины. При искусственном культивировании пневмококк нуждается в специальных питательных основах, обогащенных дефибринированной кровью животных. Рост возбудителя в искусственных условиях культивирования стимулирует повышенное содержание в атмосфере СО.

На плотных питательных средах пневмококк образует мелкие (1-2 мм в диаметре), округлые, блестящие, бесцветные колонии с ровным краем, мягкой консистенции, которые в большинстве случаев через 24 часа инкубации имеют сферическую форму с уплощенным центром, образующимся в результате аутолиза (шероховатая R-форма).

На 5%-м кровяном агаре вокруг колоний пневмококка характерно образование зеленящей зоны альфа-гемолиза. Наиболее вирулентные капсульные бактерии могут располагаться в виде капель росы, в последующем принимая сливной рост (мукоидная М-форма). Гладкие, компактные, точечные колонии (S-форма) преобладают у авирулентных штаммов.

Рост S. pneumoniae на жидких питательных средах характеризуется диффузным помутнением бульона без образования пленки.

Биохимическая активность пневмококка во многом совпадает с активностью других зеленящих стрептококков: он разлагает глюкозу, лактозу, мальтозу, сахарозу, не ферментирует маннит, салицин и сорбит, однако в отличие от других представителей зеленящих форм стрептококков не обладает способностью к росту при температуре 45°С.

Видовая специфичность пневмококка выражается в способности ферментировать инулин, чувствительности к оптохину и солям желчных кислот (дезоксихолату и таурохолату натрия). Вместе с тем в последние годы появились изоляты, устойчивые к оптохину (до 10% от всей популяции).

Вирулентность пневмококка в первую очередь обусловлена наличием полисахаридной капсулы, обеспечивающей антифагоцитарную активность, а также протеина адгезии, протеазы секреторного IgA, тейхоевой кислоты и фрагментов пептидогликана, активизирующих комплемент по альтернативному типу.

В зависимости от химического строения капсульного полисахарида выделяют более 90 серологических типов S. pneumoniae: серогруппы (обозначаются цифрами, например: серогруппа 6) и входящие в них серотипы (обозначаются буквами, например: серотип 6А). Определение серологических типов проводится с использованием серологических методик, основанных на реакции набухания капсулы в присутствии иммунной сыворотки или в реакции латкес-агглютинации. Альтернативным способом определения серогрупп (серотипов) является детекция специфических локусов бактериальной ДНК, вовлеченных в биосинтез капсульного полисахарида, с помощью различных ПЦР-методик или секвенирования ДНК.

Более 90% инвазивных заболеваний вызывается 23 серотипами возбудителя, которые входят в широко используемую в настоящее время полисахаридную вакцину (1, 2, 3, 4, 5, 6В 7F, 8, 9N, 9V, 10А, 11А, 12F, 14, 15В, 17F, 18С, 1-9F, 19А, 20, 22F, 23F, 33F).

Спектр антибиотикорезистентности пневмококка зависит от географического места изоляции и вида материала, из которого изолирован штамм (мазок из носоглотки, спинномозговая жидкость и др.). В России уровень устойчивости пневмококков, выделенных из нестерильных локусов, к пенициллинам (МПК>0,06 мг/л) составляет в среднем 11%, к макролидам - 7%, к тетрациклинам - 25%, к ко-тримоксазолу - 39%. Полирезистентностью (устойчивостью к 3 и более классам антимикробных препаратов) обладает 14,5% штаммов пневмококка, большинство из которых (>90%) выделено из респираторных образцов. Пневмококки 23-й, 19-й и 6-й серогрупп (серотипы 23F, 19F, 19А, 6В) часто характеризуются повышенной устойчивостью к пенициллину и другим антибактериальным препаратам, а также могут обладать полирезистентными свойствами, что обусловлено генетическими мутациями циркулирующих возбудителей.

Микроскопическое исследование относится к простым ускоренным методам обнаружения S. pneumoniae, позволяющим получить предварительный результат. Бактериоскопия окрашенного по Граму мазка определяет морфотип потенциального бактериального патогена. Ценность метода и решаемые задачи различаются в зависимости от того, из какого локуса организма отобран клинический материал.

Модифицированным вариантом микроскопии в комбинации с серологической диагностикой S. pneumoniae является метод Нейфельда или феномен набухания капсулы при взаимодействии с неразведенной специфической антипневмококковой сывороткой (I, II, lll типов) в присутствии синьки Лёффлера. Метод основан на способности капсул пневмококков увеличиваться в объеме в присутствии гомологичной антисыворотки, что регистрируют светооптической микроскопией. При положительном результате наблюдается резкое увеличение капсул пневмококков. При отрицательном результате капсулы едва заметны. Реакция набухания специфична и не дает положительного результата с другими капсульными бактериями, однако с его помощью невозможно идентифицировать не имеющие капсулы S. pneumoniae.

Пневмококки, имеющие капсулу, также можно визуализировать по методу Бурри-Гинса. По Бурри материал перемешивают с тушью, на фоне которой будут выделяться неокрашенные бактерии и капсулы. В модификации Гинса приготовленный по Бурри препарат дополнительно окрашивается фуксином Циля, при этом бактерии приобретают ярко малиновую окраску, а их капсулы остаются неокрашенными.

У пациентов, принимавших антибактериальные препараты, данные методы могут давать ложно-отрицательные результаты, поскольку в этом случае в клиническом материале могут присутствовать пневмококки, лишенные капсулы. Следует помнить, что при переходе S. pneumoniae из S в R-форму капсульные антигены утрачиваются.

Бактериологический метод позволяет выделить "чистую" культуру возбудителя, провести его видовую идентификацию и серотипирование, определить чувствительность к антимикробным препаратам.

Отправной точкой идентификации пневмококков на кровяном агаре является гемолитическая реакция стрептококков. S. pneumoniae - гемолитический (зеленящий) стрептококк, который по морфологическим признакам роста трудно отличим от идругих гемолитических ("зеленящих") стрептококков - S. mitis, S. oralis, S. sanguis, S. parasanguis, S. gordonii.

Признаками, подтверждающими видовую принадлежность изолята, являются его морфология (грамположительные кокки), отсутствие каталазо- и оксидазообразования, чувствительность к оптохину и лизис солями желчи. Оптохин (этилгидрокупреина гидрохлорида) селективно подавляет рост пневмококка в отличие от других "зеленящих" стрептококков. Соли желчи (в особенности дезоксихолат натрия и таурохолат натрия) обладают способностью избирательно лизировать колонии S. pneumoniae на агаре или в бульоне. Метод основан на активации пневмококковых аутолизинов - ферментов, участвующих в синтезе клеточной стенки, что приводит к визуальному лизису S. pneumoniae в течение 0,5-2 ч. Однако примерно для 14% пневмококков наблюдается неполный лизис. Дифференциальная диагностика S. pneumoniae проводится с прочими представителями рода Streptococcus: S. pseudopneumoniae (чувствительного к оптохину, но устойчивого к желчи), S. pyogenes группы А (чувствительного к бацитрацину и положительного в ПИРА-тесте), S. agalactiae группы В (положительного в тесте с гиппуратом Na и САМР-тесте), зеленящими стрептококками группы S. viridans (как правило, растущих в тиогликолевой среде при температуре 45°С). От представителей других родов: Neisseria spp., Haemophilus spp. и Corynebacterium spp., дающих схожий рост на средах первичного посева с атипичными формами пневмококков, их отличают морфология, оксидазная и каталазная активность.

Необходимо помнить, что в современной популяции до 10% изолятов пневмококков устойчивы к оптохину, они также резистентны и к бета-лактамным антибиотикам. В то же время рост некоторых "зеленящих" стрептококков подавляется оптохином.

Принадлежность S. pneumoniae, устойчивых к оптохину, необходимо подтверждать с использованием комплекса тестов, дифференцирующих между собой различные виды стрепрококков, с помощью тест-систем коммерческого производства, разрешенных к применению в Российской Федерации.

К сожалению, один из современных методов идентификации бактерий по белковому профилю, MALDI-масс-спектрометрия, не может быть использован для идентификации S. pneumoniae в связи с высоким сходством белкового профиля различных видов гемолитических стрептококков.

Конечным этапом бактериологической диагностики S. pneumoniae является определение чувствительности к антибиотикам. В настоящее время теоретически обоснованным считается подход к оценке чувствительности, предлагаемый Европейским сообществом (European on Antimicrobial Susceptibility Testing - EUCAST), основанный на признании факта существования различий между микробиологической и клинической чувствительностью/устойчивостью микроорганизмов. Для обоснования клинических критериев EUCAST использует фармакокинетические/фармакодинамические закономерности зависимости между величиной МПК антибактериального препарата в отношении микроба-возбудителя, фармакологическими характеристиками препарата и эффективностью лечения.

К способам обнаружения антигена пневмококка с целью его ускоренного выявления может быть отнесен метод латекс-агглютинации, основанный на выявлении пневмококковых капсульных полисахаридных антигенов с применением поливалентной специфической пневмококковой сыворотки. Антиген, содержащийся в исследуемом образце, взаимодействует со специфичными гомологичными антителами, которыми покрыты латексные частицы. В присутствии гомологичного антигена латексные частицы агглютинируют. В отсутствии антигена, они остаются в виде гомогенной суспензии.

Исследование проводят непосредственно с чашки первичного посева. Можно использовать сам биологический материал, как правило, ликвор или сыворотку крови. Быстроту получения результата и простоту теста могут нивелировать перекрестные реакции с антигенами других стрептококков. К преимуществам метода относят быстроту и простоту исполнения, к недостаткам - высокую стоимость, невозможность определения антигена в нестерильном биологическом материале.

В последние годы все большую популярность приобретают быстрые тесты "у постели больного", в частности иммунохроматографический экспресс-тест для выявления пневмококкового клеточного полисахарида (с-полисахарида) в моче.

Пневмония – это распространенное заболевание, поражающее взрослых и детей, требующее своевременного и квалифицированного лечения. В противном случае последствия заболевания могут быть крайне тяжелыми. Основным симптомом воспаления легких является выделение мокроты. Ее цвет позволяет специалисту сделать выводы касательно тяжести и характера течения заболевания.

При появлении первых признаков пневмонии больному следует в обязательном порядке обратиться за консультацией к врачу. Записаться на прием в Юсуповскую больницу можно при помощи электронной формы на сайте либо по телефону.

Пневмония сама по себе возникает крайне редко. Как правило, она является осложнением запущенных форм заболеваний органов дыхательной системы. Курс лечения воспаления легких врач назначает в зависимости от характера заболевания. Пневмония может быть:

бактериальной;
вирусной;
грибковой;
смешанной.

Основным симптомом пневмонии у детей и взрослых является мокрота. Именно ее цвет принимается во внимание при постановке диагноза. Чтобы не допускать развитие воспаления легких, важно при любых недомоганиях обращаться за медицинской помощью.

Доктора Юсуповской больницы – ведущие специалисты России, которые для каждого пациента подбирают индивидуальную программу лечения, позволяющую вылечить любое заболевание на ранних и запущенных стадиях. Своевременное обращение к врачу и эффективный курс лечения позволяют предотвратить развитие такой тяжелой патологии, как воспаление легких.

Цвет мокроты при пневмонии

Вначале при пневмонии появляются выделения их носа. Они имеют вид серозной либо гнойной жидкости, нередко с примесями крови.

По мере развития заболевания увеличивается объем слизи в органах дыхания и появляется мокрота. В ней содержатся микроорганизмы, продукты клеточного распада, кровь, пыль и прочее. Цвет таких выделений может быть любого цвета в зависимости от характера заболевания – от белого до черного.

Мокрота белого или серого цвета

Прозрачная мокрота, выделения белого и серого оттенков являются абсолютно нормальным явлением. Но их чрезмерное количество может свидетельствовать о различных патологиях, а именно:

аллергии;
хроническом бронхите;
инфекции дыхательных путей;
отеке легких.

Мокрота серого цвета может быть следствием курения или сильного загрязнения воздуха.

Диагностика в Юсуповской больнице либо опровергнет подозрение на патологию, и пациент будет точно знать, что его здоровью ничто не угрожает, либо позволит своевременно назначить курс эффективного лечения и не допустить развитие тяжелых осложнений.

Чтобы записаться на прием к врачу в Юсуповскую больницу, не нужно выстаивать в очередях, корректировать свой рабочий график, визит к доктору администраторы больницы согласуют на удобное для каждого пациента время.

Мокрота при воспалении легких желтого цвета

Появление в мокроте желтого оттенка может свидетельствовать о развитии острого воспаления легких и острого бронхита. Также она может быть признаком аллергии и астмы.

Мокрота желтого цвета указывает на борьбу организма с вирусом и на нормальную работу иммунной системы. Густая мокрота темно-желтого цвета может быть следствием бактериальной инфекции при синусите. В случае появления такого симптома необходимо срочно обратиться за медицинской помощью.

Доверяйте свое здоровье профессионалам. Доктора Юсуповской больницы – ведущие специалисты России, которые на основании полученных результатов анализов поставят точный диагноз и разработают для каждого пациента эффективный план терапии.

Воспаление легких часто является следствием неправильно назначенного лечения. В государственных клиниках довольно часто пациента лечат от патологий, которых у них никогда не было, при этом основное заболевание развивается с большей скоростью. Такая картина наблюдается по причине низкой квалификации врачей госклиник, плохой оснащенности больниц медицинской современной аппаратурой и отсутствием медикаментов.

Мокрота при воспалении легких зеленого цвета

Зеленый цвет мокроты при кашле указывает на развитие хронической инфекции, а также на наличие таких заболеваний, как:

пневмония;
абсцесс легкого;
кистозный фиброз.

Наряду с мокротой зеленого оттенка у больного может наблюдаться общая слабость, лихорадка, снижение аппетита. Данные признаки должны послужить поводом к незамедлительному обращению к врачу.

Мокрота при воспалении легких темного цвета

Появление мокроты ржавого оттенка может наблюдаться у курильщиков. Это говорит о том, что от вредной привычки нужно срочно избавиться. Также темный цвет мокроты может наблюдаться при употреблении некоторых продуктов питания и напитков, например, шоколада, кофе, красного вина.

Если мокрота темного цвета присутствует длительное время, то это может быть признаком:

хронической пневмонии;
хронического бронхита;
туберкулеза;
рака легкого;
пневмокониоза.

В любом случае, больному необходимо обратиться к врачу.

Мокрота при воспалении легких с примесями крови

Наличие розоватого оттенка слизи, полос и пятен крови в ней может свидетельствовать о различных заболеваниях, наиболее опасным из которых является рак легких.

Но также мокрота с примесями крови может появляться при:

пневмококковой пневмонии
внутреннем кровотечении;
туберкулезе;
отеке легкого на фоне хронической сердечной недостаточности;
абсцессе легкого.

Появление мокроты с кровью всегда является признаком тяжелого заболевания и требует срочного медицинского вмешательства. Юсуповская больница принимает больных 7 дней в неделю 24 часа в сутки. Записаться на прием к врачу заблаговременно можно по номеру телефона клиники.

Анализ мокроты на чувствительность к антибиотикам позволит точно определить возбудителя болезни и подобрать эффективное лечение. Во время микроскопического исследования специалист определяет ДНК микроорганизмов в отделяемом, а также их концентрацию. Тест также включает проверку реакции бактерий на лекарственные препараты. По результатам анализа пациент получит рекомендации по лечению.

Анализ мокроты на чувствительность к антибиотикам требует специальной подготовки. Отделяемое сдают утром, натощак, методом отхаркивания. Перед этим необходимо тщательно почистить зубы и прополоскать рот. Для лучшего отделения слизи за день до теста рекомендуют пить больше жидкости. Исследование не проводят на фоне приема антибиотиков или противовоспалительных средств.

При сухом кашле для забора мокроты используют катетер или проводят биопсию. Манипуляции не входят в стоимость анализов на чувствительность к антибиотикам, оплачиваются отдельно.

Анализ мокроты на посев с определением чувствительности к антибиотикам

Анализ мокроты является одним из ключевых методов дифференциальной диагностики всевозможных бронхолегочных патологий: пневмоний, абсцесса, бронхоэктатической болезни и др. При этом такой метод лабораторного исследования, как посев мокроты, позволяет точноопределить качественный состав исследуемого биоматериала, выявить в нем патогенные микроорганизмы (или условно-патогенные микроорганизмы в высоком титре) и определить их чувствительность к конкретным группам антибиотиков и бактериофагов. Благодаря этому, данный анализ позволяет подобрать эффективное лечение даже в ситуации, когда наблюдается устойчивость патогенных микроорганизмов к многим антибактериальным препаратам.

Когда назначается анализ мокроты на посев с определением чувствительности к антибиотикам?

Проведение микробиологического исследования мокроты путем бактериологического посева с последующим определением чувствительности к антибиотикам выполняется:

при затяжных и тяжело протекающих заболеваниях дыхательных путей,
с целью установления возбудителя инфекционного заболевания,
для подбора рациональной антибактериальной терапии,
в случае неэффективности принимаемых антибиотиков.

Сбор биоматериала

Мокрота на посев собирается утром до первого приема пищи в специальный стерильный контейнер с плотно закрывающейся крышкой. Для того, чтобы в биоматериал не попали примеси слюны и слизи, перед сбором образца для исследования проводится тщательное очищение ротовой полости и носоглотки.

Анализу подлежит только свежая мокрота, выделенная в результате продолжительного откашливания.

Сбор мокроты на посев с определением чувствительности к антибиотикам проводят до начала лечения антибактериальными препаратами. В противном случае полученный результат может быть ложноотрицательным.

Результаты

Исследование мокроты больного с целью определения антибактериальной чувствительности включает в себя:

микроскопию мазка мокроты и предварительную идентификацию типа возбудителя;
посев материала на питательную среду;
культивацию микрооганизмов в индивидуально подобранных условиях;
повторную микроскопию с подробной идентификацией выращенных колоний и определением основных свойств микроорганизмов;
определение чувствительности к антибиотикам.

С помощью различных методов определения чувствительности возможно не только выделение спектра антибактериальных препаратов, обладающих губительным воздействием на выявленные микроорганизмы, но и установление минимально приемлемой для положительного терапевтического эффекта концентрации веществ.

В каких ситуациях посев мокроты необходим

Это исследование показано при всех заболеваниях средних и нижних дыхательных путей инфекционного происхождения : острые и хронические бронхиты, плевриты, пневмонии . Обязательно проводится при осложнениях этих патологий, например, при абсцессе легкого.

Неоднократно анализ должен осуществляться при малейшем подозрении на туберкулез или проводиться как контрольное исследование при его терапии. В ряде случаев посев мокроты назначается при онкологических заболеваниях легких, для уточнения диагноза при возможных их сочетаниях с инфекционной патологией.

Необходимо учитывать, что дыхательные пути содержат нормальную микрофлору, некоторые виды которой при ослабленном иммунитете могут стать патогенными. Наиболее частыми возбудителями воспалительных заболеваний дыхательных путей являются золотистый стафилококк, гемофильная палочка, клебсиелла, стрептококк, энтеробактерии, а также микроскопические грибки. При туберкулезе выявляется палочка Коха.

Как проводится исследование

Забор мокроты должен быть произведен до начала приема антибиотиков и осуществляется 3 способами: путем отхаркивания, аспирацией или с помощью бронхоскопии. Перед этим пациент должен почистить зубы и прополоскать рот. Полученный образец герметично упаковывают и отправляют в лабораторию, где в течение 2 часов он должен быть посеян в чашки Петри на питательную среду. Этот метод называют бактериологическим. При образовании колоний микроорганизмов производится их идентификация. Обнаружение поселений, созданных патогенными бактериями, является важным диагностическим критерием.
Следующий этап исследования-это определение чувствительности микробов к антибиотикам. Для этого чаще используется метод дисков: небольшие диски, пропитанные растворами различных антибактериальных препаратов, помещаются в колонии бактерий. Далее отслеживается скорость гибели колонии вокруг них. Чем быстрее это происходит, тем эффективнее антибиотик.

Расшифровка полученных данных

Бактериологический способ дает возможность не только определить тип возбудителя и его реакцию на антибиотики, но и подсчитать его количественно. Содержание 10/5 и более патогенных микроорганизмов на 1 мл мокроты считается этиологически значимым признаком.
Результат посева дает важнейшую информацию о причине заболевания, его тяжести и помогает выбрать правильный путь лечения.

Читайте также: