Посев кала при холере алгоритм
Обновлено: 05.10.2024
Свидетельство и скидка на обучение каждому участнику
Смоленское областное государственное бюджетное профессиональное образовательное учреждение
ПРАКТИЧЕСКИХ МАНИПУЛЯЦИЙ
ПМ.04. и ПМ. 07. Выполнение работ по профессии младшая медицинская сестра по уходу за больными
МДК. 04.03. и 07.03. Технология оказания медицинских услуг
31.02.01. Лечебное дело углубленной подготовки
34.02.01. Сестринское дело базовой подготовки
ВЗЯТИЕ КАЛА ДЛЯ КОПРОЛОГИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ
Цель: степень переваривания пищи различными отделами и желудочно-кишечного тракта.
Показания: заболевания желудочно-кишечного тракта.
Оснащение: чистая сухая емкость от 30 до 100 мл, шпатель, направление в лабораторию.
Направление
в клиническую лабораторию
Кал на копрологию
Иванов Иван Петрович
Подпись м/с_____ Дата_____
I . Подготовка к процедуре за 4-5 дней до исследования
1. Идентифицировать пациента, представиться. Уточнить, как к нему обращаться.
2. Объяснить пациенту цель и последовательность проведения предстоящей процедуры: кал собирается в день исследования утром после опорожнения кишечника в судно (без мочи и воды).
3. Объяснить пациенту особенности подготовки к процедуре: соблюдение в течение 4-5 дней перед сбором кала диеты, назначенной врачом (диета Шмидта, Певзнера).
4. Получить добровольное информированное согласие пациента на предстоящую процедуру. В случае отсутствия такового уточнить дальнейшие действия у врача.
5. Обеспечить пациента чистой сухой емкостью 30 -100 мл, шпателем и направлением в лабораторию.
II . Выполнение процедуры
1.Пациенту утром совершить акт дефекации в чистое сухое судно.
2. Взять шпателем после акта дефекации 5-10 г фекалий из нескольких мест (без примесей мочи и воды) и поместить их в приготовленную емкость.
3. Закрыть емкость крышкой.
4. Поместить шпатель в контейнер с дезинфектантом.
5. Поставить емкость с биологическим материалом в специальный ящик в санитарной комнате.
6. Вымыть и осушить руки.
III . Окончание процедуры
1. Медицинской сестре обеспечить доставку биологического материала в клиническую лабораторию.
Примечание: допускается хранение емкости с фекалиями при температуре 3-5 о С не более 8 часов.
2. Провести дезинфекцию использованного инструмен тария с последующей утилизацией одноразового.
3. С делать запись в медицинских документах о выполнении процедуры и реакции пациента.
4. Подклеить полученные результаты иссле дования в медицинскую документацию.
ВЗЯТИЕ КАЛА ДЛЯ БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ
Цель: выявление больных и бактерионосителей патогенной кишечной флорой.
Показания: кишечные инфекции; обследование.
Оснащение: стерильная пробирка с консервантом и стерильной металлической петлей (одноразовая стерильная трубка Циммана), перчатки, стерильный шпатель, клеенка и впитывающая пеленка (если процедура выполняется в постели); ширма (если процедура выполняется в палате), направление в лабораторию.
Направление
в бактериологическую лабораторию
Кал на микрофлору
Иванов Иван Петрович
Подпись м/с_____ Дата_____
I . Подготовка к процедуре
1. Идентифицировать пациента, представиться. Уточнить, как к нему обращаться. Объяснить ход и цель процедуры. Убедиться в наличии у пациента добровольного информированного согласия на предстоящую процедуру. В случае отсутствия такового уточнить дальнейшие действия у врача.
2. Вымыть и осушить их. Надеть перчатки.
3. Подготовить необходимое оснащение. Поставить ширму (при необходимости).
П. Выполнение процедуры
1. Помочь пациенту лечь на левый бок с согнутыми и притянутыми к животу ногами.
Примечание: если пациенту противопоказано положе ние на левом боку, то манипуляцию следует осущест влять в положении пациента лежа на спине с согнуты ми в коленях и разведенными ногами.
2. Положить под ягодицы пациента клеенку, а на нее — впитывающую пеленку.
3. Раздвинуть ягодицы I и II пальцами левой руки. Правой рукой взять из пробирки металлическую петлю и ввести вращательными движениями в прямую кишку на глубину 8—10 см, собирая содержимое со стенок.
4. Извлечь петлю из прямой кишки и поместить в пробирку с консервантом, не касаясь наружной стороны пробирки и других предметов.
Примечание: в условиях стационара кал можно взять непосредственно из судна стерильным шпателем сразу после акта дефекации.
5. Убрать пеленку и клеенку, поместить их в мешок для использованного материала.
6. Снять перчатки и поместить их в контейнер с дезинфектантом.
7. Вымыть и осушить руки.
8. Помочь пациенту занять удобное положение, накрыть его. Удостовериться, что он чувствует себя нормально.
III . Окончание процедуры
1. Медицинской сестре обеспечить доставку биологического материала в бактериологическую лабораторию.
Примечание: в некоторых случаях допускается хране ние пробирки с консервантом в холодильнике при тем пературе 3—4° С не более 12 часов.
2. Провести дезинфекцию использованного инструмен тария с последующей утилизацией одноразового.
3. С делать запись в медицинских документах о выполнении процедуры и реакции пациента.
4. Подклеить полученные результаты иссле дования в медицинскую документацию.
ВЗЯТИЕ КАЛА ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ НА СКРЫТУЮ КРОВЬ
Цель: подтверждение скрытого кровотечения из верхних отделов пищеварительной системы.
Показания: язвенная болезнь желудка и двенадцатиперстной кишки, язвы кишечника, циррозы печени.
Оснащение: чистая сухая стеклянная емкость, направление в лабораторию, шпатель.
Направление
в клиническую лабораторию
Кал на скрытую кровь
Иванов Иван Петрович
Подпись м/с_____ Дата_____
I . Подготовка к процедуре за 3-5 дней до исследования
1. Идентифицировать пациента, представиться. Уточнить, как к нему обращаться.
2. Объяснить пациенту цель и последовательность проведения предстоящей процедуры: кал собирается в день исследования утром после опорожнения кишечника в судно (без воды и мочи).
3. Объяснить пациенту особенности подготовки к процедуре: соблюдение в течение 3-5 дней перед сбором кала диеты, в которой исключаются мясные и рыбные блюда, а также зеленые овощи, гранаты, яблоки, гречневая каша; нельзя принимать лекарственные препараты, содержащие железо, йод, бром, висмут.
4. Уточнить у пациента или его родственников, нет ли у него другого источника кровотечения (десны, кровохарканье, геморрой, менструация), приводящего к ложноотрицательному результату. В случае положительного ответа дать рекомендации, позволяющие исключить попадание крови в фекалии (в особых случаях следует проконсультироваться у врача).
5.Получить добровольное информированное согласие пациента на предстоящую процедуру. В случае отсутствия такового уточнить дальнейшие действия у врача.
6. Обеспечить пациента чистой сухой емкостью, шпателем и направлением в лабораторию.
II . Выполнение процедуры
1.Пациенту утром совершить акт дефекации в чистое сухое судно.
2. Взять шпателем после дефекации 5-10 г фекалий из разных мест (без примесей воды и мочи) и поместить их в лабораторную посуду.
3. Закрыть емкость крышкой.
4. Поместить шпатель в контейнер с дезинфектантом.
5. Поставить емкость с биологическим материалом в специальный ящик в санитарной комнате.
6. Вымыть и осушить руки.
III . Окончание процедуры
1. Медицинской сестре обеспечить доставку биологического материала в клиническую лабораторию.
Примечание: допускается хранение емкости с фекалия ми при температуре 3—5 ° С не более 8 часов.
2. Провести дезинфекцию использованного инструмен тария с последующей утилизацией одноразового.
3. С делать запись в медицинских документах о выполнении процедуры и реакции пациента.
4. Подклеить полученные результаты иссле дования в медицинскую документацию.
ВЗЯТИЕ КАЛА ДЛЯ ОБНАРУЖЕНИЯ ПРОСТЕЙШИХ
Цель: выявление простейших.
Показания: амебиаз, лямблиоз.
Оснащение: флакон с консервантом (1/2 флакона), нестерильные перчатки, шпатель, лейкопла стырь, направление в лабораторию.
Противопоказания: нет .
Направление
в клиническую лабораторию
Кал на простейшие
Иванов Иван Петрович
Подпись м/с_____ Дата_____
I. Подготовка к процедуре
1. Идентифицировать пациента, представиться. Уточнить, как к нему обращаться.
2. Объяснить пациенту ход и цель процедуры.
3. Убедиться в наличии у пациента добровольного информированного согласия на предстоящую процедуру. В случае отсутствия такового уточнить дальнейшие действия у врача.
4. Подготовить необходимое оснащение.
II . Выполнение процедуры
1. Пациенту утром совершить акт дефекации в чистое сухое судно.
2. Взять шпателем сразу после акта дефекации свеже выделенный кал (1/3 от объема консерванта) и поме стить его во флакон (простейшие при остывании кала теряют свою подвижность и быстро гибнут).
3. Закрыть флакон пробкой и зафиксировать лейкопла стырем.
4. Поместить шпатель в контейнер с дезинфектантом.
5. Отдать собранный биологический материал медицинской сестре.
6.Вымыть и осушить руки.
III . Окончание процедуры
1. Медицинской сестре доставить биологический материал в теплом виде в клиническую лабораторию не позднее, чем через 15- 20 мин с момента дефекации (простейшие при остывании кала теряют свою подвижность и быстро гибнут).
2. Провести дезинфекцию использованного инструмен тария с последующей утилизацией одноразового.
3. Сделать запись в медицинских документах о выполнении процедуры и реакции пациента.
4. Подклеить полученные результаты иссле дования в медицинскую документацию.
ВЗЯТИЕ КАЛА ДЛЯ АНАЛИЗА НА ЯЙЦА ГЕЛЬМИНТОВ
Цель: диагностика глистной инвазии.
Показания: гельминтоз, обследование.
Оснащение: чистая сухая стеклянная емкость с широким горлом, крышка, направление в лабораторию, деревян ный шпатель.
Забор материала от больных осуществляется медицинским персоналом лечебного учреждения немедленно при выявлении больного и до начала лечения антибиотиками. Руководитель несет ответственность за правильность отбора проб, хранения и их доставки в лабораторию.
В зависимости от конкретных задач и условий материал может быть направлен в лабораторию в нативном виде (срок транспортировки не более 2 часов) в 1% п.в. или консервированные. У больных тяжелой формой ГЭК материал направляют в лабораторию нативным и в 1% п.в.
При обследовании больных с тяжелой формой холеры для посева достаточно 0,5мл. материала, а легкими формами энтерита – 2г. испражнений. В консервант материал следует помещать в количестве 3г. на 5-6мл. среды.
Способы отбора проб
Испражнения и рвотные массы в объеме 10-20г. стерильными ложками или стеклянными трубками с резиновой грушей переносят из судна (лотка) в стерильную банку или пробирку.
Для взятия материала у больных с обильным водянистым стулом можно использовать резиновый катетер №26 или №28, один конец которого вводят в прямую кишку, а другой отпускают в банку или пробирку. Жидкие испражнения набирают в сосуд свободно или при легком надавливании на брюшную полость – стенку.
Стерильный ректальный ватный тампон из гигроскопичной ваты вводят в прямую кишку на глубину 5-6см и собирают им содержимое со стенок кишечника. Тампон опускают во флакон или пробирку с 1% п.в., обломив часть деревянного стержня.
Желчь берут при дуоденальном зондировании в лечебном учреждении. В отдельные пробирки собирают 2 порции. Из желчного пузыря и желчных протоков материал доставляют нативным.
От умерших с подозрением на холеру берут отрезки верхней, средней и нижней частей тонкого кишечника длиной около 10см. Отрезки вырезают между двойными лигатурами, наложенными на оба конца изымаемого участка кишечника.
Желчный пузырь после перевязки протока извлекают целиком. Взятые образцы органов трупа укладывают отдельно в стерильные банки. Для отбора проб используют чистую стерильную или обмытую кипятком посуду, не содержащую даже следов дезинфицирующих растворов. Стерилизацию ее проводят автоклавированием, сухим жаром или кипячением в 1% содовом растворе. Банки или пробирки с материалом закрывают непромокающими пробками и пергаментной бумагой, укладывают в специально подготовленную для транспортировки тару и перевозят на служебном транспорте с сопровождающим.
При осуществлении эпидемического надзора за холерой исследование материала от здоровых и больных ОКЗ без подозрения на холеру при отсутствии возможности 2-х сменной работы, можно проводить в условиях односменной работы, используя 1% п.в. с теллуритом К в качестве 1 или 2 среды накопления.
Используют 1% п.в. по 5-10мл без теллурита К. Продолжительность сохранения проб при температуре до 25 0 С до 24 часов в биксах, шкафу, в специально выделенной комнате, закрывающейся на замок. В случае, когда температура больше 25 0 С материал следует брать в 5-10мл 1% п.в. с теллуритом К.
НА ВЫХОДНЫЕ ДНИ: забор материала в 50мл. 1%п.в. с теллуритом К (время при 25-60 часов, 25-30-48 часов). На флаконах или пробирках с п.в. добавляется этикетка или надпись с указанием названия среды и времени приготовления ее. В стационарах среды для отбора проб рекомендуется сохранять не более 2-х суток при температуре не выше 10 градусов.
Диагностика холеры. Микробиологическая диагностика холеры. Выявление холеры. Лечение холеры. Профилактика холеры.
Основу диагностики холеры составляют выделение и идентификация возбудителя. Цели исследований на холеру — выявление больных и вибрионосителей; установление причины смерти при исследовании трупов; контроль над эффективностью лечения больных и санации носителей, контроль над объектами внешней среды и эффективностью дезинфекционных мероприятий. Материал для исследований — испражнения, рвотные массы, жёлчь, секционный материал (фрагменты тонкой кишки и жёлчного пузыря), постельное и нательное бельё, вода, ил, сточные воды, гидробионты, смывы с объектов окружающей среды, пищевые продукты, мухи и др.
При проведении исследований на холеру необходимо соблюдать следующие правила:
• Материал исследований на холеру следует доставлять в лабораторию не позже 2 ч после забора (так как возбудитель быстро погибает, особенно в испражнениях). При невозможности срочной доставки образцы помещают в транспортные среды (1% пептоннан вода с рН 8,2-8,6).
• Ёмкости для материала нельзя обеззараживать химическими веществами, так как возбудитель чувствителен даже к их следовым количествам. Все образцы помещают в герметически закрываемую транспортную тару.
Посев холеры проводят на жидкие среды обогащения, щелочной МПА, элективные и дифференциально-диагностические среды (например, TCBS-arap). Изучают рост на первой среде накопления и выполняют высев на щелочной агар и вторую среду накопления (что повышает высевае-мость возбудителя). Если на первом этапе при исследовании нативного материала ускоренными методами получают положительные результаты, пересев на вторую среду накопления не проводят. Подозрительные колонии пересевают для выделения чистых культур.
Затем определяют морфологические, биохимические свойства и антигенную структуру холеры с помощью агглютинирующих О-, OR-, Инаба- и Огава-антисывороток. Важное диагностическое значение имеет типирование с помощью холерных диагностических бактериофагов. Все V. cholerae лизируются бактериофагом IV группы, а вибрионы биовара Эль-Тор — фагами группы V.
• Для ускоренной биохимической идентификации возбудителя холеры предложен набор СИБ из 13 тестов (оксида-за, индол, лактоза, глюкоза, сахароза, манноза, арабиноза, маннит, инозит, аргинин, орнитин, лизин), дифференцирующий от представителей семейства Enterobacteriaceae, бактерий родов Plesiomonas, Aeromunas и др.
• При выделении Vibrio cholerae группы, отличной от 01, возбудитель необходимо типировать с помощью других антисывороток. При выделении таких бактерий от больного с диареей обязательным считают проведение всего объёма исследований дли диагностики холеры.
• Определение AT в крови больных холерой носит вспомогательный характер. Их выявляют в РА, а также путём обнаружения вибриоцидных AT и антитоксинов.
Лечение холеры. Профилактика холеры.
Восполняют потерю жидкости и электролитов, проводят антибактериальную терапию холеры препаратами тетрациклинового ряда. Альтернативные антибактериальные препараты — левомицетин, ко-тримоксазол и фуразолидон.
Профилактика холеры включает организацию санитарно-гигиенических мероприятий, предупреждающих занос заболевания; проведение санитарно-просветительной работы среди населения; раннее выявление больных и носителей; массовое профилактическое назначение тетрациклинов в районах эпидемической опасности.
Для специфической иммунопрофилактики холеры разработаны убитая вакцина из штаммов Огава и Инаба, холероген-анатоксин для подкожного введения и бивалентная вакцина из анатоксина и О-Аг Огава и Инаба. Эффективность их использования не превышает 60-70%, невосприимчивость сохраняется в течение 3-6 мес, поэтому вакцин опрофилактику применяют по эпидемиологическим показаниям.
В очагах холеры хороший эффект даёт профилактический приём тетрациклина.
Информация на сайте подлежит консультации лечащим врачом и не заменяет очной консультации с ним.
См. подробнее в пользовательском соглашении.
4.2. МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ. БИОЛОГИЧЕСКИЕ И МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ
Лабораторная диагностика холеры
1. РАЗРАБОТАНЫ: Федеральной службой по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (Ю.М.Федоров, Н.Я.Жилина); Федеральным государственным учреждением здравоохранения "Ростовский-на-Дону научно-исследовательский противочумный институт" (Ю.М.Ломов, Б.Н.Мишанькин, Л.С.Подосинникова, Л.Г.Воронежская, И.Я.Черепахина, Т.А.Кудрякова, Б.Л.Мазрухо, Л.М.Смоликова, И.В.Рыжко, Р.И.Цураева, Э.А.Москвитина, Б.П.Голубев, С.О.Водопьянов, Е.В.Монахова, В.Д.Кругликов, Н.Р.Телесманич, А.Б.Мазрухо, В.В.Агафонова); Федеральным государственным учреждением здравоохранения "Противочумный Центр" (А.А.Кюрегян, С.М.Иванова, Ю.С.Королев); Федеральным государственным учреждением здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" (А.К.Адамов, З.В.Малыхина, Т.В.Бугоркова, Н.И.Смирнова, Л.Ф.Ливанова; А.В.Топорков, С.И.Заднова, Н.А.Осина, Е.С.Казакова, Н.Б.Челдышева, А.В.Осин); Федеральным государственным учреждением здравоохранения "Иркутский научно-исследовательский противочумный институт" (А.С.Марамович, В.С.Ганин, Л.Я.Урбанович, В.И.Погорелов, Л.В.Миронова, Е.С.Куликалова); Федеральным государственным учреждением здравоохранения "Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт" (В.Н.Савельев); Федеральным государственным учреждением здравоохранения "Причерноморская противочумная станция" (Г.В.Гальцева); Государственным Центром по антибиотикам (С.В.Сидоренко); Российской медицинской академией последипломного образования (Е.А.Ведьмина); ГИСК им. Л.А.Тарасевича (Т.И.Анисимова, Л.В.Саяпина).
2. УТВЕРЖДЕНЫ Руководителем Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации Г.Г.Онищенко 31 мая 2007 г.
3. ВВЕДЕНЫ ВЗАМЕН Методических указаний "Лабораторная диагностика холеры" МУ 4.2.1097-02.
1. Область применения
1.1. Методические указания "Лабораторная диагностика холеры" разработаны для внедрения и применения действующих нормативных документов, определяющих требования к эпидемиологическому надзору за холерой в части, касающейся организации и проведения лабораторной диагностики холеры.
1.2. Настоящие методические указания предназначены для специалистов бактериологических лабораторий учреждений, осуществляющих государственный санитарно-эпидемиологический надзор, лечебно-профилактических и противочумных учреждений.
2. Нормативные ссылки
2.3. Санитарные правила "Порядок учета, хранения, передачи и транспортирования микроорганизмов I-IV групп патогенности. СП 1.2.036-95".
2.4. Санитарные правила "Безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности и гельминтами. СП 1.2.731-99".
2.6. Методические указания "Организация работ при исследованиях методом ПЦР материала, инфицированного микроорганизмами I-II групп патогенности. МУ 1.3.1794-03".
3. Характеристика возбудителя холеры
Холера - острая инфекционная болезнь с диарейным синдромом, фекально-оральным механизмом заражения, пищевым, водным и контактно-бытовым путями распространения возбудителя. Относится к группе инфекций, борьба с которыми регламентируется Международными медико-санитарными правилами (2005).
Возбудителями холеры являются холерные вибрионы О1 (классического и эльтор биоваров) и О139 серогрупп.
Токсигенные () холерные вибрионы обеих серогрупп вызывают заболевание холерой, склонное к эпидемическому и пандемическому распространению (эпидемически значимые штаммы), нетоксигенные () - единичные или групповые заболевания холерой при общем источнике заражения.
У нетоксигенных () штаммов холерных вибрионов возможно присутствие отдельных генов патогенности, среди которых определенную значимость имеет ген , участвующий в реализации процесса адгезии.
Характеристика генома выделенных холерных вибрионов биологическими методами широко используется для эпидемиологического анализа и оценки эпидемической значимости выделенных штаммов.
4. Организация лабораторных исследований
Диагностические исследования на холеру в регламентированном объеме могут проводить:
- бактериологические лаборатории учреждений, осуществляющих государственный санитарно-эпидемиологический надзор, лечебно-профилактических и противочумных учреждений, имеющие разрешение на работу с микроорганизмами III группы патогенности;
- лаборатории особо опасных инфекций центров гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора и ведомств, имеющие разрешение на проведение диагностических исследований на холеру;
- лаборатории противочумных учреждений, имеющие разрешение на проведение диагностических исследований на холеру и на работу с возбудителем холеры.
Организация и выполнение диагностических исследований на холеру в лабораториях должны осуществляться в соответствии с требованиями, регламентирующими:
- безопасность работы с микроорганизмами III-IV групп патогенности - для бактериологических лабораторий учреждений, осуществляющих государственный санитарно-эпидемиологический надзор, и лечебно-профилактических учреждений;
- безопасность работы с микроорганизмами I-II групп патогенности - для лабораторий (отделов) особо опасных инфекций центров гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора, ведомств и противочумных учреждений;
- порядок учета, хранения, передачи и транспортирования микроорганизмов IV группы патогенности.
Порядок получения лабораториями разрешения на диагностические исследования на холеру определяется действующими нормативными документами о порядке выдачи разрешений на эти виды работ.
В условиях осложнения эпидемиологической обстановки временное разрешение на проведение диагностических исследований на холеру бактериологическим лабораториям учреждений, осуществляющих государственный санитарно-эпидемиологический надзор, и другим, функционирующим в составе лабораторной службы очага, в случае расширения их функциональных обязанностей представляется решением медицинского штаба очага.
4.1. При осуществлении эпидемиологического надзора
4.1.1. Бактериологические лаборатории учреждений, осуществляющих государственный санитарно-эпидемиологический надзор, и лечебно-профилактические учреждения проводят плановые диагностические исследования на холеру материала от больных острыми кишечными инфекциями, определенного контингента здоровых лиц и проб из объектов окружающей среды в объеме, предусмотренном действующими нормативными документами по эпидемиологическому надзору за холерой.
Исследования ведут до установления отрицательного результата анализа или до выделения культуры с характерным для вибрионов ростом на агаровой и полиуглеводной средах и положительной реакцией на оксидазу. Культуры проверяют на чистоту в мазке, окрашенном по Граму, на подвижность и в реакции агглютинации на стекле (далее слайд-агглютинации) с холерными сыворотками О1, Огава, Инаба, РО и О139.
При положительном результате слайд-агглютинации немедленно сообщают в органы Роспотребнадзора в субъекте Российской Федерации, культуру для окончательной идентификации немедленно доставляют в специализированную лабораторию в установленном порядке.
При отрицательном результате слайд-агглютинации:
- неагглютинирующиеся холерными сыворотками О1 и О139 культуры, выделенные от людей, направляют для дальнейшей идентификации в специализированную лабораторию;
- неагглютинирующиеся холерными сыворотками О1 и О139 культуры, выделенные из объектов окружающей среды, идентифицируют на месте или по согласованию передают в учреждение Роспотребнадзора.
- 4.1.2. Лаборатории особо опасных инфекций центров гигиены и эпидемиологии Роспотребнадзора и ведомств:
- выполняют диагностическое исследование материала от больных и умерших с подозрением на холеру и проб из объектов окружающей среды;
- идентифицируют культуры вибрионов, выделенных в территориальных и ведомственных лабораториях, определяя их таксономическую принадлежность, а также определяют эпидемическую значимость (токсигенность) и антибиотикочувствительность холерных вибрионов О1 и О139 серогрупп по регламентированным для этих лабораторий тестам;
- осуществляют (или организуют) бактериологический контроль качества питательных сред и других диагностических препаратов, используемых в территориальных лабораториях;
- представляют оперативную информацию о выделении культур холерных вибрионов О1 и О139 серогрупп;
- в установленном порядке немедленно передают в территориальное противочумное учреждение культуры холерных вибрионов, таксономическая принадлежность или токсигенность которых имеющимися средствами диагностики не определяется;
- в течение 5 дней после окончания идентификации передают в территориальное противочумное учреждение или в головной по проблеме "Холера" Ростовский-на-Дону научно-исследовательский противочумный институт все культуры холерных вибрионов О1, О139, независимо от объекта обследования, и других серогрупп при выделении от больных;
- контролируют деятельность территориальных лабораторий, оказывают им методическую помощь по всем вопросам лабораторного обеспечения эпидемиологического надзора за холерой.
4.1.3. Лаборатории противочумных учреждений:
- проводят исследования материала от больных и умерших с подозрением на заболевание холерой, а также проб из объектов окружающей среды;
- подтверждают таксономическую принадлежность культур холерных вибрионов, выделенных на курируемой территории;
- идентифицируют все атипичные культуры холерных вибрионов с использованием дополнительных методов серологической, биохимической и других видов идентификации с целью уточнения таксономической принадлежности;
- определяют эпидемическую значимость (токсигенность) и антибиотикочувствительность культур;
- осуществляют методическое руководство по всем вопросам лабораторного обеспечения эпидемиологического надзора за холерой на курируемой территории;
- в установленном порядке выделенные культуры холерных вибрионов с паспортами передают в территориальный противочумный институт, головной по проблеме "Холера" Ростовский-на-Дону научно-исследовательский противочумный институт, одновременно паспорта на эти же культуры направляют в противочумный центр Роспотребнадзора.
Лабораторное обеспечение эпидемиологического надзора за холерой осуществляют в соответствии с действующими нормативными и методическими документами. Профилактические исследования на холеру проводят в течение рабочего дня с использованием соответствующих питательных сред, диагностические исследования материала от подозрительных на холеру больных (трупов) - в условиях круглосуточного режима работы лаборатории.
4.2. При проведении противоэпидемических мероприятий
Организация и регламентирование деятельности лабораторий, а также формирование лабораторной службы в очаге холеры осуществляются в соответствии с действующими нормативными документами по организации и проведению противохолерных мероприятий.
5. Бактериологическое исследование
В системе противохолерных мероприятий значительное место занимает бактериологический анализ, от правильности и своевременности проведения которого зависит характер и объем профилактических и противоэпидемических мероприятий.
Исследования проводят с целью:
- выявления больных холерой и вибриононосителей;
- установления окончательного диагноза при вскрытии трупов лиц, умерших от подозрительного на холеру заболевания;
- обоснования выбора средств этиотропной терапии холеры;
- бактериологического контроля эффективности лечения больных холерой и вибриононосителей;
- бактериологического контроля объектов окружающей среды, в том числе поверхностных водоемов;
- бактериологического контроля эффективности обеззараживания в очаге инфекции.
5.1. Отбор и доставка материала на исследование
Материалом для бактериологического анализа могут служить испражнения, рвотные массы, желчь, трупный материал (отрезки тонкого кишечника и желчный пузырь); предметы, загрязненные испражнениями (постельное и нательное белье и др.); вода, ил, гидробионты, сточные воды, содержимое выгребных туалетов; смывы с объектов окружающей среды, пищевые продукты, мухи и др.
Материал от больного забирает медицинский персонал лечебного учреждения, немедленно после выявления больного и до начала лечения антибиотиками. Руководитель является ответственным за правильность отбора, хранения и своевременность доставки проб в лабораторию.
Необходимо учитывать высокую чувствительность холерных вибрионов к дезинфицирующим средствам и кислотам, возможность антагонистического действия сопутствующей микрофлоры и предполагаемую концентрацию возбудителя в исследуемом материале. Если в материале от больных алгидной формой холеры концентрация возбудителя достигает 10-10 м.к./мл, то в испражнениях больных легкой формой и леченных антибиотиками, реконвалесцентов и носителей количество холерных вибрионов обычно не превышает 10-10 м.к./г.
Для отбора проб используют чистую стерильную посуду, не содержащую следов дезинфицирующих растворов. Стерилизацию посуды и других средств забора материала проводят автоклавированием, сухим жаром или кипячением в 2%-м растворе пищевой соды.
Материал для исследования должен быть доставлен не позже, чем через 2 ч после его взятия. В случае удлинения сроков доставки используют транспортные среды. Наиболее удобной и достаточно эффективной является 1%-я пептонная вода (рН 8,4±0,1).
В пептонную воду в качестве ингибитора сопутствующей флоры может быть добавлен теллурит калия из расчета 1:100000-1:200000 или моющее средство "Прогресс" в концентрации 0,1-0,2%. В отдельных случаях для транспортирования материала могут быть использованы солевые консерванты (см. раздел 7).
Читайте также: