Сапрофиты в бак посеве

Обновлено: 05.10.2024

Сапрофитная микрофлора — общее название микроорганизмов, которые в норме могут находиться в различных полостях, каналах и отверстиях организма.

Эти микроорганизмы не вызывают заболеваний, более того, поддерживают местный иммунитет и участвуют в ферментативных процессах (пищеварение)

Наша рассылка для людей, которые хотят знать правду о медицине в России. Расскажем, как лечиться правильно, объясним разницу между псевдо- и доказательной медициной. Разберем на примерах, каким новым технологиям можно доверять, а на что не стоит тратить время и деньги.

1. Бузолева Л.С. Адаптация патогенных бактерий к абиотическим факторам окружающей среды: автореф. дис. … д-ра биол. наук. – Владивосток, 2001. – 48 с.

2. Бухарин О.В., Семенов А.В., Черкасов С.В. Характеристика антагонистической активности пробиотических бактерий при их взаимодействии // Клин. микробиол. антимикроб. химиотер. – 2010. – Т. 12. – № 4. – С. 347–352.

3. Вахитов Т.Я., Петров Л.Н. Регуляторные функции экзометаболитов бактерий // Микробиология. – 2006. – Т. 75. – № 4. – С. 483.

4. Гершун В.И. Влияние абиотических факторов на жизнеспособность листерий в почве // Сиб.вестник с-х науки. – Новосибирск, 1980. – № 3. – С. 78–81.

7. Сидоренко М.Л., Бузолева Л.С. Влияние различных видов минеральных удобрений на размножение Listeria monocytogenes в почвах // Агрохимия. – 2008. – № 5. – С. 59–64.

8. Сидоренко М.Л., Бузолева Л.С. Характер взаимоотношений сапрофитной микрофлоры почв через газообразные метаболиты // Микробиология. – 2008. – Т. 77. – № 2. – С. 273–277.

9. Стародумова С.М., Зайцева Е.А. Серологический мониторинг листериозной инфекции у диких мышевидных грызунов в Приморском крае // Дальневосточный Журнал Инфекционной Патологии. – 2012. – № 20. – С. 84–86.

10. Терехова В.Е., Айздайчер Н.А., Бузолёва Л.С., Сомов Г.П. Влияние метаболитов морских микроводорослей на размножение бактерий вида Listeria monocytogenes // Биология моря. – 2009. – Т. 35. – № 4. – С. 306–309.

11. Тирранен Л.С., Ковров Б.Г., Черепанов О.А. Характер взаимодействия микроорганизмов через их газообразные метаболиты // Микробиология. – 1980. – Т. 49. – № 5. – C. 788–793.

Процесс существования патогенных бактерий в естественных экосистемах в настоящее время мало изучен. На самом деле автономное обитание в почве или воде многих патогенных бактерий и грибов, вызывающих инфекционные болезни человека и животных, закономерные и многообразные связи с почвенными и водными организмами делают их полноправными сочленами естественных экосистем, главным образом, почвенных и водных [5]. Listeria monocytogenes относится к возбудителям сапрозоонозов и обладает двойственной (сапрофитной и паразитической) природой, благодаря чему способна существовать как в эндотермных, так и в эктотермных организмах, растительных объектах, а также в почвенной и водной средах. Обитание L. monocytogenes в почве является известным фактом, что доказано как выделением возбудителей сапрозоонозов из этих субстратов [4, 6], так и в модельных экспериментах [1]. В настоящее время установлено, что на существование этих микроорганизмов в почвах оказывают влияние как абиотические факторы среды [7], так и биотические [8, 10].

Присутствие микроорганизмов в той или иной природной зоне определяется не только условиями внешней среды, но и наличием контроля со стороны других микроорганизмов. Многие исследователи [2, 3] считают, что соединения, продуцируемые микроорганизмами, могут действовать как внутри- или межвидовые регуляторы микробных сообществ. При этом отмечено как стимулирующее, так и ингибирующее действие веществ микробного происхождения на размножение микроорганизмов [8, 11].

Возможность того, что естественная микрофлора почвы может оказывать положительное влияние на сохранение патогенных микроорганизмов в почве, представляет особый интерес для исследований в этом направлении. В связи с этим, целью данной работы являлось изучение влияния сапрофитной микрофлоры почвы на размножение L. monocytogenes.

В работе использовали штаммы сапрофитных бактерий, выделенные нами из естественно сложившейся микробной ассоциации бурой лесной почвы, которая является природным очагом листериозной инфекции [9].

Всего было выделено из почвы 32 штамма сапрофитных бактерий, различных по своим культуральным свойствам. Идентификацию активных штаммов сапрофитных бактерий проводили с помощью физиолого-биохимических тестов и специфических праймеров в ПЦР-реакции.

Действие газообразных метаболитов испытуемых культур на рост тест-культур исследовали экспресс-методом Л.С. Тирранен (1980) в нашей модификации. Культура, действие летучих веществ которой изучали, далее именуется испытуемой, та, на которой проверялось это действие – тест-культурой. Все сапрофитные бактерии поочередно исследовались как испытуемые, все патогенные бактерии использовались только в качестве тест-культур. Воздействие испытуемой культуры на тест-культуру оценивали как положительное (стимулирующее) или отрицательное (ингибирующее), когда размер колоний тест-культур в опыте был соответственно увеличен или снижен на 20 % и более по сравнению с контролем. Действие испытуемой культуры оценивали как нулевое, если размер колоний в опыте отличался от контрольных не более чем на ±20 %. Контролем служили чашки Петри с тест-культурами, не подвергавшимися действию летучих продуктов жизнедеятельности испытуемых микроорганизмов. Результаты сравнения размеров колоний выражали в миллиметрах. Статистическую обработку данных проводили по Ф.Г. Лакину (1990). Учитывали среднюю арифметическую величину диаметра колоний, ошибку средней арифметической.

Наиболее активный штамм, отобранный с помощью экспресс-метода, в дальнейшем проверяли на активность экзометаболитов в жидкой среде (фосфатно-буферный раствор Петерсона-Кука, 0,1 % глюкоза, pH = 7,2). Динамику роста культуры листерий замеряли на спектрофотометре Т70 UV/VIS Spectrometer PG Instruments Ltd (Англия) при длине волны 590 нм. Наблюдение за ростом вели в течении 11 суток.

Поставленные эксперименты позволили оценить влияние летучих метаболитов сапрофитных бактерий на размножение листерий. Следует отметить, что большинство исследуемых сапрофитных штаммов в той или иной степени стимулировали рост листерий, по сравнению с контролем. Среди них 3 % – отрицательных (случаи, когда летучие метаболиты сапрофитных микроорганизмов подавляют рост испытуемой культуры патогенных бактерий), 90 % – положительных (случаи, когда летучие метаболиты стимулировали рост испытуемой микрофлоры), остальные результаты (7 % случаев) были нулевыми. Наблюдавшиеся в опытах нулевые взаимодействия могут являться слабыми положительными или отрицательными воздействиями, не учитываемыми данным методом исследования.

Наибольшее стимулирующее влияние на рост L. monocytogenes оказал штамм сапрофита, идентифицированный нами как Bacillus pumilus. Летучие метаболиты этого почвенного штамма стимулировали рост всех штаммов L. monocytogenes, взятых в эксперимент, по сравнению с контролем.

Одной из задач данного исследования было подобрать оптимальную концентрацию экзометаболитов B. pumilus в жидкой среде, обладающую максимальным стимулирующим эффектом в отношении роста листерий (штамм 6144 № 315). Для этого использовали рабочие концентрации экзометаболитов бацилл: 0,5; 1; 1,5; 2; 2,5; 3 мл. Биологическое действие экзометаболитов выражали в процентах прироста биомассы по сравнению с контролем.

Следует отметить, что стимулирование роста культуры листерий наблюдали с максимумом на седьмые сутки для всех концентраций экзометаболитов сапрофита.

В результате эксперимента было показано, что экзометаболиты, взятые в концентрации 0,5 мл, в меньшей степени, чем все остальные концентрации, стимулировали рост листерий (на 30 % на седьмые сутки опыта). Стимулирование L. monocytogenes (штамм 6144 № 315) экзометаболитами сапрофита B. pumilus в концентрации 1,5 мл оказалось максимальным среди всех концентраций (на 123 % на седьмые сутки опыта).

Таким образом, установлено, что почвенные бактерии в микробных сообществах с L. monocytogenes, в большей степени стимулируют, чем угнетают рост патогенов. Стимуляция роста L. monocytogenes при взаимодействии с экзометаболитами штамма сапрофита, зависела от концентрации экзометаболитов, от биологических особенностей, как штамма сапрофита, так и штамма листерий. Подобрана наиболее оптимальная концентрация экзометаболитов B. pumilus – 1,5 мл, при которой отмечен максимальный стимулирующий эффект. Метаболиты, продуцируемые почвенной микрофлорой, могут действовать как регуляторы микробных сообществ. В частности, стимулирование роста и размножения L. monocytogenes может способствовать появлению эпидемических очагов, представляющих угрозу для человека.

На сервисе СпросиВрача доступна бесплатная консультация лора онлайн по любой волнующей Вас проблеме. Врачи-эксперты оказывают консультации круглосуточно. Задайте свой вопрос и получите ответ сразу же!

фотография пользователя

Маргуба, чувствительность должны были сделать, я его оплатил, но не сделали написали, что Антибиотикограмма для микроорганизма не предусмотрена , как видно в приложенном файле.

фотография пользователя

фотография пользователя

Зачем лечить сапрофитов. У вас есть жалобы на боли в горле, температуру, озноб, насморк? Зачем сдавши мазок?

Лариса, Зимой постоянно заболевает горло, при нахождении на улице более 5-10 мин заболеваю, вот и подумал может какая нибудь зараза в горле сидит. Еду не могу есть из холодильника не салаты не колбасы, вообщем все приходиться подогревать это же не нормально.

фотография пользователя

Елена, Антибиотики и денол уже пропил теперь сказали Нексиум полгода пить и на повторное обследование желудка.

фотография пользователя

Здравствуйте, начните рассасывать бактоблис.
Поддерживает естественную микробиоту.
Какие жалобы на горло?

Екатерина, Жалобы на горло Зимой постоянно заболевает горло, при нахождении на улице более 5-10 мин заболеваю, вот и подумал может какая нибудь зараза в горле сидит. Еду не могу есть из холодильника не салаты не колбасы, вообщем все приходиться подогревать это же не нормально.

фотография пользователя

Екатерина, чувствительность должны были сделать, я его оплатил, но не сделали написали, что Антибиотикограмма для микроорганизма не предусмотрена , как видно в приложенном файле.

фотография пользователя

фотография пользователя

фотография пользователя

А! Увидела .
Тем не менее, там обнаружен зеленящий стрептококк , он часто бывает при хрон тонзиллите и по разным классификациям относится и к сапрофиотам, и к условно патогенным микробам( т .е по снижении иммунитета хозяина. Может дать толчок заболеванию)

сапрофит бактерия

Кто такие сапрофиты❓

Бактерии сапрофиты — микроорганизмы, которые питаются органическими веществами распада. Выполняют роль 🧹 дворников, которые очищают место для новой жизни, разлагая органику на составляющие давая функционировать другим организмам.

Для нормального существования необходимы соединения:

  • азота;
  • белка;
  • углевода;
  • витамина;
  • нуклеотида;
  • пептида.

Для жизнедеятельности используют продукты 🍃 разложения и гниения. Выделяют пищеварительные ферменты, начинают всасывать и усваивать ряд растворенных продуктов, извлекая питательные микроэлементы из мертвого с разлагающим органическим материалом.

Бактерии сапрофиты — мельчайшие патогены, представителями которых называются:

  • синегнойные палочки;
  • кишечные палочки;
  • клостридии;
  • бифидобактерии;
  • морганеллы и другие.

👆 Однако❗ Под воздействием снижения иммунитета и чрезмерного увеличения численности бактерий, сапрофиты приводят к инфекционному заболеванию 🤧: пневмонии, менингиту.

Сапрофиты также низшие существа, некоторые из которых могут причинить вред человеку. Например, пылевые клещи. Элементы живут везде, питаясь пылью.


Сапрофиты делятся на группы:

  1. Вынужденных сапрофитов, которые получают перечень питательных веществ исключительно разложением органики.
  2. Мельчайших бактерий, которые питаются абсорбирующим типом. Питательные субстраты при этом перевариваются за счет действия ферментов, которые выделяются бактериями. Ферменты превращают детрит в молекулы. Питание осмотрофое, то есть, питание через поверхностные клеточные структуры без захвата твердых частиц, в данном случае происходит поэтапно. Сапрофиты выделяют перечень некоторых гидролитических ферментов, ответственных за гидролиз детритовых молекул, к примеру полисахаридов. Данные молекулы разделяются на маленькие. В итоге растворимые биомолекулы начинают высвобождаться. Элементы поглощаются из-за градиентов концентрации элементов на внеклеточном, цитоплазматическом уровне. После пресечения мембраны вещества идут к цитоплазме. В результате сапрофитовые клетки развиваются и питаются.

Для чего используют бактерии сапрофиты ❓

Сапрофитные бактерии занимают первое место в живом мире. Часть из них участвует в переработке органических отходов.

Компоненты (химически индивидуальные вещества) называются санитарами окружающей природы, звеном в круговороте органики, разлагающие ткани на компоненты. Элементы минерализуют почву и преобразуют химические вещества. В данном случае используют для фосфорного, азотистого, углеродного преобразования и брожения.


Разложившиеся материалы под действием бактерий содержат такие питательные вещества как кальций, железо и фосфор, служащие основой для развития растений. Конечным продуктом выступают молекулы углеводов, которые выделяются в окружающую среду и улавливаются в качестве процесса фотосинтеза.

Как увеличить эффективность сапрофитов ❓

Компоненты незаменимы для переработки органики, освобождения почвы от патогенной флоры, тяжелых металлов и химических загрязнений. Элементы необходимы для высвобождения окружающей среды от опасных продуктов гниения. Получаемые субстраты от бактерий содержат улучшенные питательные вещества и биоудобрения для растительности. Поэтому чем больше сапрофитов, тем выше результативность обработки органики и промышленности.

Процессу размножения препятствует 🌞 солнце, магнитное поле. Помогает уровень влажности, кислотности, температурный режим. Для роста бактерий нужна обильная влажность. Чем меньше воды, тем меньше клеток. Кислотность — главенствующая роль во влиянии на развитие бактерий. Для бактериального роста требуется кислотность 4-9 рН. Температура 🌡️ также играет роль на результативность бактериального действия, роста. Режим должен быть не больше 25 градусов.


Один из способов утилизации разложения органики и организмов – вермикультивирование.

Вермикультивирование называется процедурой разведения технологических пород микроорганизмов для переработки органики. Сущность процесса состоит в утилизации органики и получения объемов продукции – биогумуса.

Переработка заключается в подготовке органики ферментации. Процедура нужна, чтобы масса перестала выделять опасные газы. Микроорганизмы поглощают субстрат, наращивают личную численность и биомассу и помогают в улучшенном разложении органики. Поэтому вермикультивирование называется популярным утилизационным способом органического разложения.


Заключение 🦠

В результате сапрофиты — бактерии, которые питаются рядом органических веществ распада. Компоненты незаменимы для освобождения почвы от патогенной микрофлоры, тяжелых металлов и загрязнений.

Бактерии требуются для высвобождения окружающей среды от продуктов гниения. Для улучшения работы необходимы благоприятные условия, в частности, повышенная влажность, отсутствие чрезмерного солнечного света и ряд других факторов.

Вспомогательным способом разложения органики сапрофитам называется вермикультивирование. Это отрасль занимающаяся переработкой органических отходов в биомассу червей и удобрения.


К оплате принимаются наличные и карты.

Бактериологический посев микрофлоры кишечника - что это такое и как сдать анализ

Что такое нормальная микрофлора кишечника?

В человеческом организме присутствует множество разнообразных микроорганизмов. Основным местом их скопления у человека является кишечник. Их число оценивается в 10 14 - 10 18 разнообразных микробов, а их объём занимает больше половины толстого кишечника. Это огромное число.

Учёными установлено, что в здоровом состоянии у человека микрофлора кишечника представляет сложную и сбалансированную систему из бифидобактерий, лактобактерий и кишечной палочкой с нормальными ферментными свойствами. Основной функцией микрофлоры, живущей в симбиозе с человеком, является защита организма от токсинов и вредных бактерий, выработка ферментов, необходимых для пищеварения, участие в обмене веществ, и защита от аллергенов проходящих через пищеварительный тракт.

Однако, не всё так просто, кроме полезных микробов в кишечнике присутствуют микроорганизмы, которые могут нанести вред здоровью человека в случае понижения иммунитета на фоне болезни или по иным причинам, их называют условно-патогенными (золотистый стафилококк, энтеробактерии и др. ). Другой группой, присутствующей в кишечнике, являются сапрофиты (энтерококки, дрожжи, эпидермальный и сапрофитный стафилококки и др.). Третья группа – транзитные микроорганизмы, попадающие в кишечник из внешней среды. Если человек здоров, то они покидают организм без следа.

Пока флора кишечника в норме и иммунитет силён, то проблем с этими группами не возникает, однако в случае заболеваний можно столкнуться с разнообразными нарушениями микроэкологии кишечника – дисбактериозом, дисбиозом, микробиоценозом. В международной научной литературе и медицинской практике данные состояния называются - микроэкологическими нарушениями микрофлоры кишечника.

В Отраслевом стандарте "Протокол ведения больных. Дисбактериоз кишечника" (ОСТ 91500.11.0004-2003), Министерства здравоохранения РФ дано определение дисбактериоза кишечника.

Его рассматривают как клинико-лабораторный синдром, возникающий при различных заболеваниях и клинических ситуациях, характеризующихся изменениями в составе нормальной микрофлоры и появлением других различных микроорганизмов, влияющих на метаболитические и иммунные функции организма.

Подобные изменения часто несут негативный характер и отрицательно сказываются на здоровье пациента. Для полноценной диагностики и определения причин нарушений используется бактериологическое исследование на дисбактериоз.

Что может быть причиной НЕГАТИВНЫХ изменений микрофлоры кишечника?

Как любая сложная система организм человека подвержен влиянию множества факторов, как внешних, так и внутренних, многие из которых могут негативно влиять на микрофлору провоцировать как лёгкие, так и серьёзные нарушения здоровья.

Самые распространённые причины дисбактериоза, которые позволяет диагностировать и в дальнейшем скорректировать лечащим врачом бактериальный посев:

  • Инфекционные заболевания;
  • Вредные условия труда;
  • Неправильное питание;
  • Приём ЛЮБЫХ лекарственных средств без назначения врача;
  • Воздействие аллергенов;
  • Иммунные заболевания;
  • Разнообразные заболевания ЖКТ;
  • Бактериальные вагинозы;
  • Искусственное вскармливание , мастит у матери;
  • Различные возрастные изменения микрофлоры.

Для каждого из состояний свойственно особенное количественное и качественное содержание микроорганизмов в кишечнике. Проще говоря, на основании того в каком количестве, и какие микробы содержатся в кишечнике, можно делать выводы о причинах того или иного нарушения.

Как проводится посев на бактериальную флору кишечника?

После поступления в лабораторию материал проходит следующие этапы исследования:

1. Подготовка материала к посевам;

2. Посев фекалий в разнообразные, заранее подготовленные среды (девять различных сред), каждая из которых направлена на выращивание определённого вида микроорганизмов. В стандартное исследование входит определение : Кишечной палочки(нормальной, со сниженной ферментативной активностью, гемолизирующей ), Лактозонегативных энтеробактерий: Родов Протей; Клебсиелла; Цитробактер; Энтеробактер; Гафния; Серрация; Псевдомонады. Патогенных энтеробактерий : Родов Шигелла; Сальмонелла. Кокковые формы: Родов Стафилококки; Энтерококки; Стрептококки. Дрожжеподобных грибов Candida. Бифидобактерий. Лактобактерии.;

3. Оценка специалистом лаборатории количества и вида микроорганизмов проводится в течение 5 дней. Такой срок связан с необходимостью выделения и определения разных микроорганизмов в разный период, т.к. им нужны разные температуры и время для роста;

4. При обнаружении патогенных (вредоносных) и условно-патогенных микробов проводится дополнительное исследование на их восприимчивость к различным бактериофагам, антибиотикам и противогрибковым препаратам. Если у пациента не выделены микроорганизмы, требующие постановки чувствительности к бактериофагам, антибиотикам, противогрибковым препаратам, исследование не проводится;

5. После всех этих действий результаты анализа выдаются заказчику;

Т.к. бактериологический посев является многоэтапным исследованием, связанным со сроком выделения и определения различных микроорганизмов , то для проведения полноценного анализа требуется неделя.

Интерпретация результатов.

На бланках указаны данные о норме содержания тех или иных микроорганизмов и их количестве в поступившем материале. Там же вы найдёте дополнительную информацию.

Однако, напоминаем, что правильно интерпретировать результат бактериологического посева на дисбактериоз в совокупности с другими анализами, историей болезни пациента и составить полную картину о заболевании с последующим назначением коррекции или лечения микрофлоры кишечника должен только квалифицированный врач.

Читайте также: