Посев крови на менингококк алгоритм

Обновлено: 08.07.2024

4.2. БИОЛОГИЧЕСКИЕ И МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ

Лабораторная диагностика менингококковой инфекции и гнойных бактериальных менингитов

Дата введения с момента утверждения

1. Разработаны: Центральным научно-исследовательским институтом эпидемиологии Минздрава России (И.С.Королева, Г.В.Белошицкий, Л.В.Спирихина, А.М.Грачева, И.М.Закроева); Центром Госсанэпиднадзора в г.Москве (Н.Н.Филатов, Г.Г.Чистякова); Департаментом Госсанэпиднадзора Минздрава России (Г.Ф.Лазикова, Н.А.Кошкина, З.С.Середа).

2. Утверждены Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации, Первым заместителем Министра здравоохранения Российской Федерации Г.Г.Онищенко 4 марта 2004 года.

3. Введены впервые.

1. Область применения

1.1. В настоящих методических указаниях изложены организационные и методологические принципы лабораторной диагностики менингококковой инфекции и гнойных бактериальных менингитов.

1.2. Методические указания предназначены для специалистов органов и учреждений государственной санитарно-эпидемиологической службы и здравоохранения.

2. Общие сведения

Менингиты бактериальной природы - тяжелейшие инфекционные заболевания, при которых в инфекционный процесс вовлекаются мягкие мозговые оболочки основания головного мозга и верхняя часть спинного мозга.

Локализация очага воспаления, а также характерные для этих заболеваний тяжелейшие клинические проявления и генерализация процесса с поражением различных органов и тканей указывают на необходимость быстрого решения вопроса об этиологии заболевания и назначения адекватной антибактериальной терапии, которая неоднозначна для гнойных бактериальных менингитов (ГБМ) разной этиологии.

От грамотного и своевременного проведения исследований по определению этиологического агента заболевания и как можно более раннего начала соответствующего этиотропного лечения зависит исход заболевания, показатели летальности, число и тяжесть постинфекционных осложнений.

Данные лабораторной диагностики бактериальных менингитов и изучение основных биологических свойств у возбудителей лежат в основе определения прогностических критериев в системе эпидемиологического надзора за бактериальными менингитами, в том числе и генерализованными формами менингококковой инфекции (ГФМИ).

Необходимо учитывать, что одним из проявлений ГФМИ является распространенная клиническая форма "менингококковый менингит" без менингококкцемии, при которой точный клинический диагноз без проведения лабораторных исследований поставить невозможно.

Рационально организованная комплексная лабораторная диагностика гнойных бактериальных менингитов любой этиологии позволяет достоверно контролировать состояние проблемы этой инфекционной патологии.

3. Эпидемиологические особенности менингококковой инфекции и гнойных бактериальных менингитов

Гнойные бактериальные менингиты, включающие в себя генерализованные формы менингококковой инфекции, широко распространены во всем мире. Эти заболевания отличаются не только высокими показателями заболеваемости, смертности и летальности, но и частыми осложнениями, затрудняющими нормальное развитие и полноценную жизнь переболевшего менингитом. Показатели летальности от ГБМ в зависимости от возраста, клинических форм болезни и от этиологического агента в развитых странах составляют в среднем 3-19%, а в развивающихся - 37-60%. С признаками тяжелой инвалидизации (глухота, задержка умственного развития, патологическая неврологическая симптоматика и др.) из стационаров выписывается более 50% пациентов. По данным Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ) ежегодно в мире регистрируется 1 млн случаев гнойных бактериальных менингитов, из которых 200 тыс. заканчиваются летально.

Заболевание наиболее часто встречается в первые два года жизни, хотя известно, что бактериальный менингит может развиться в любом возрасте. Этиологическими агентами являются менингококки, пневмококки, гемофильные палочки, стафилококки, энтеробактерии, стрептококки, листерии и другие микроорганизмы. Наиболее значимыми возбудителями признаны менингококки, пневмококки и гемофильные палочки типа "b", отвечающие за более чем 90% случаев от числа всех расшифрованных ГБМ. Следует подчеркнуть важную роль и "прочих" микроорганизмов, особенно в этиологии бактериальных менингитов у новорожденных. Клиническая и лабораторная дифференциальная диагностика синдрома менингита должна включать и учитывать большой спектр заболеваний, таких как туберкулезный менингит, малярия, ряд энцефалитов, способных давать похожую на бактериальный менингит клиническую картину.

Среди гнойных бактериальных менингитов генерализованные формы менингококковой инфекции вызывают наибольшую озабоченность в мире из-за периодически возникающих пандемий, эпидемий, эпидемических подъемов заболеваемости и вспышек.

Менингококки классифицируют по составу полисахарида на 12 серологических групп - А, В, С, X, Y, Z, W-135, 29Е, K, L, Н, I, из которых только первые три серогруппы (А, В, С) отвечают за более чем 90% случаев клинически выраженной генерализованной менингококковой инфекции.

Важным параметром эпидемиологического надзора за МИ является изучение серогрупповой характеристики менингококков, выделенных из ликвора и крови больных генерализованными формами менингококковой инфекции. По данным Российского центра по эпидемиологическому надзору за менингококковой инфекцией и гнойными бактериальными менингитами, в 2002 году в серогрупповой характеристике менингококков почти в равных соотношениях выявлены менингококки серогруппы А (38,2%) и В (36,6%). Доля менингококков серогруппы С составила 24,6%. На другие серогруппы менингококков и негруппируемые штаммы приходилось 0,5% (табл.2).

Серогрупповая характеристика менингококков в Российской Федерации в 2002-2003 годах (в % от общего числа отгруппированных штаммов)

* НА - неагглютинирующиеся штаммы.

По обобщенным данным, в 2003 году отмечалось некоторое преобладание менингококков серогруппы А (35%), а доля менингококков серогруппы В и С составила 31 и 17,8% соответственно. На редкие серогруппы менингоккоков приходилось 1,1%, а доля неагглютинирующихся штаммов составила 15,1%.

Выявленные показатели серогруппового пейзажа менингококков в 2003 году различались по территориальным округам Российской Федерации. Так, в Южном и Центральном федеральных округах выявлено преобладание менингококков серогруппы А (52,8 и 44,9% соответственно). В других округах распространение эпидемиологически опасной серогруппы А было незначительным и колебалось от 3 (Северо-Западный федеральный округ) до 9,5% (Дальневосточный федеральный округ). Вместе с тем, в Северо-Западном, Дальневосточном и Сибирском федеральных округах значительно преобладали менингококки серогруппы В (66,7, 52,4 и 48,9% соответственно). Наименьшим территориальным колебаниям было подвержено распространение менингококков серогруппы С, при этом их удельный вес составил в среднем 17,8% с ранжированным интервалом колебаний от 14,6 (Южный федеральный округ) до 37,9% (Уральский федеральный округ).

Микробиологическое подтверждение ГФМИ и изучение биологических свойств менингококков, выделенных от больных (из крови и ликвора), являются необходимой составляющей для формирования системы эпидемиологического надзора и выявления особенностей течения эпидемического процесса МИ на определенной территории. Выявление эпидемиологических параметров позволяет оценивать эпидемиологическую обстановку и определять тактику вакцинопрофилактики. В Российской Федерации разрешены для применения и используются полисахаридные вакцины, способные защитить от заболеваний, вызываемых менингококками серогруппы А и серогруппы С.

Ведущие позиции в этиологии эндемического бактериального менингита занимают гемофильные палочки типа "b" (Haemophilus influenzae тип "b" - Hib) и пневмококки.

Заболевания, вызываемые Hib, распространены повсеместно и входят в блок детских инфекций. Hib-возбудитель вызывает большой спектр гнойно-септических воспалений: менингит, пневмония, эпиглотит, остеомиелит, перикардит, артрит и другие. В этиологической структуре бактериальных менингитов среди детей Hib-возбудитель занимает второе место после менингококков. В отличие от других бактериальных менингитов Hib-менингиты встречаются почти исключительно среди детей раннего возраста: 80-95% Hib-менингитов приходится на возраст до 5 лет. Заболевание не носит различий, связанных с полом: в равной степени болеют лица как женского, так и мужского пола. Внутригодовая сезонность не имеет выраженного характера, но наблюдается возрастание числа случаев заболеваний весной и осенью. Летальность составляет 3-6% и оценивается как высокая. В этой связи Hib-менингиты относят к категории опасных инфекционных заболеваний детского возраста. Применение разрешенных в Российской Федерации вакцинных препаратов защищает от возникновения Hib-заболеваний.

Инфекционные заболевания пневмококковой этиологии являются актуальной проблемой практического здравоохранения, что обусловлено ведущей ролью S.pneumoniae (пневмококка) в структуре инфекций дыхательных путей, особенно внебольничных пневмоний, отитов, синуситов, бактериальных менингитов, в более редких случаях как возбудителя эндокардитов, септических артритов, флегмон и других заболеваний.

Резервуар пневмококковой инфекции - больные и носители. Уровень носительства максимален в организованных коллективах и достигает у детей 30-50%, у взрослых 20-30%. Основной путь передачи - контактный, при вспышках - воздушно-капельный. Пик заболеваемости приходится на осенне-зимний период. Мужчины болеют в два раза чаще, чем женщины.

В результате попадания пневмококков в кровоток и центральную нервную систему возбудитель вызывает инвазивную инфекцию в виде бактериемии и менингита. Генерализация процесса обусловлена низким уровнем специфического и неспецифического иммунитета и вирулентными свойствами возбудителя.

Менингиты пневмококковой этиологии занимают второе место в этиологической структуре бактериальных менингитов, уступая только генерализованным формам менингококковой инфекции. Они отличаются тяжелым и осложненным течением, часто требующим проведения интенсивных терапевтических и реанимационных мероприятий, высокими показателями летальности, развитием резидуальных явлений, нередко приводящих к тяжелой инвалидизации больных. От 50 до 80% больных при поступлении в стационар направляются в реанимационные отделения. Летальность среди детей до года и лиц пожилого возраста старше 65 лет достигает от 40 до 70%. Более трети переболевших страдают цереброгенными астено-вегетативными расстройствами, неврологическими и психическими дефицитами различной степени тяжести.

Пневмококковые менингиты не входят в перечень инфекций, подлежащих обязательной регистрации в Российской Федерации, учет заболеваний проводится только на отдельных территориях. По данным, полученным Российским центром по эпидемиологическому надзору за менингококковой инфекцией и гнойными бактериальными менингитами, уровень заболеваемости пневмококковыми менингитами в 2001-2003 годы (г.Москва) составил 0,8 на 100 тыс. населения. Доля взрослых старше 25 лет в структуре заболевших составляла 80%. Общая летальность определялась на уровне 29% (среди детей до 14 лет - 9%, взрослых - 31,7%). Показатели смертности составили 0,23 на 100 тыс. населения (среди детей до 14 лет - 0,05 на 100 тыс., среди взрослых - 0,27 на 100 тыс. населения).

Пневмококковые менингиты, как правило, являются следствием вторичной локализации S.pneumoniae, и осложняют течение пневмонии, отита, синусита и других гнойно-септических заболеваний. В тех случаях, когда определить первичную локализацию пневмококковой инфекции не удается, говорят о первичном пневмококковом менингите. Инфицирование оболочек и вещества головного мозга чаще всего происходит гематогенным путем, но возможно распространение возбудителя в результате непосредственного перехода из гнойных очагов, расположенных вблизи оболочек мозга (гнойный отит или гайморит), либо путем метастазирования из более отдаленных очагов (абсцесс легкого), либо в результате травмы. Фоном для развития пневмококкового менингита служат острые респираторные заболевания, грипп и другие простудные заболевания.

По капсульным полисахаридам пневмококки разделены на 90 серотипов, имеющих различное эпидемиологическое значение. Из наиболее опасных серотипов приготовлены пневмококковые вакцины, использующиеся для вакцинации групп риска. В группы риска в первую очередь входят дети в возрасте до года и лица пожилого возраста старше 65 лет, лица, имеющие в анамнезе хронические заболевания сердца, легких, печени (особенно у больных алкоголизмом), почек, эндокринную патологию, сахарный диабет, гематологические, онкологические заболевания, черепно-мозговые травмы, ликворею, иммунодефициты различного генеза.

Гнойные бактериальные менингиты, вызванные "прочими" этиологическими агентами, отличаются своей мозаичностью по этиологическому признаку и особенно часто встречаются у новорожденных детей. В неонатальный период (от рождения до 2-х месяцев) преобладающими этиологическим агентами бактериальных менингитов являются бактерии семейства Enterobacteriaceae: Eshericnia coli, Salmonella spp., Citrobacter spp. Значимыми возбудителями в этой возрастной категории являются Streptococcus agalactiae (группа В) и Listeria monocytogenes. С возрастом соотношение этиологических агентов меняется и основными возбудителями становятся менингококки, пневмококки и гемофильные палочки типа "b", каждый из которых может занимать лидирующее положение в зависимости от времени наблюдения, эпидемиологической ситуации, территориальных особенностей и многих других причин. Удельный вес так называемых "прочих" этиологических агентов, по данным Российского центра по эпидемиологическому надзору за менингококковой инфекцией и гнойными бактериальными менингитами составляет 5% от общего числа этиологически подтвержденных случаев. Так, из 1999 бактериологически расшифрованных случаев, количество бактериальных менингитов, обусловленных "прочими" возбудителями, было равно 97, при этом выявлено 17 различных этиологических агентов, среди которых: Candida albicans - 22,7%, Staphylococcus aureus - 17,5%, Streptococcus pyogenes - 14,4%, Streptococcus agalactiae - 10,3%, Escherichia coli - 7,2%, Listeria monocytogenes - 7,2%, Klebsiella pneumoniae - 6,2%, Pseudomonas aeruginosa - 4,1% и другие в единичных случаях.

Таким образом, главная особенность гнойных бактериальных менингитов - полиэтиологичность возбудителей, которые относятся к разным таксономическим категориям и требуют неоднозначных методических приемов при лабораторной идентификации возбудителей.

4. Основные принципы лабораторной диагностики менингококковой инфекции и гнойных бактериальных менингитов

Основные принципы лабораторной службы по этиологической расшифровке гнойных бактериальных менингитов и подтверждению клинического диагноза базируются на особенностях самого заболевания:

тяжелейший симптомокомплекс клинических проявлений в первые дни болезни указывает на необходимость экстренного незамедлительного проведения исследований по определению этиологии заболевания с обязательным использованием методов экспресс-диагностики;

ответ должен быть не только быстрым, но и безошибочно точным. Это чрезвычайно актуально для ГБМ, так как заболевания полиэтиологичны по своей природе. Данное обстоятельство необходимо учитывать при организации работы лабораторий по этиологической расшифровке заболеваний. Показано, что практически любой микроорганизм может быть причиной бактериального менингита, но основных возбудителей три. Это менингококки, пневмококки и гемофильные палочки типа "b", отвечающие за 85-90% от общего числа расшифрованных случаев. На выявление этих основных возбудителей и должны быть направлены все силы и средства лабораторий, занимающихся исследованием материала от больных с подозрением на бактериальный менингит;

учитывая то, что очагом воспаления являются мягкие мозговые оболочки головного мозга и спинной мозг, основным материалом для исследования является спинно-мозговая жидкость (СМЖ). Кроме того, из-за возникающей генерализации процесса обязательным объектом исследования является и кровь.

Исследование носоглотки для подтверждения клинического диагноза ГФМИ представляется нецелесообразным и, если исследование все же проводят и при этом из носоглотки выделяют менингококки, то расценивать данный факт необходимо как выявление локализованных форм - назофарингита (если есть клинические признаки воспаления в носоглотке) или носительства (если нет клинических признаков локализованного воспаления).

Теоретическое обоснование подходов к лабораторной диагностике бактериальных менингитов (в том числе и генерализованных форм менингококковой инфекции) следует сочетать с адекватной практической составляющей. Основой рутинного алгоритма ежедневной работы являются специальные требования к объему патологического материала, подлежащего исследованию, и комплексное методологическое оснащение исследований.

5. Отбор материала для исследования

Основным биологическим материалом для исследования при бактериальных менингитах служат спинно-мозговая жидкость и кровь. Для бактериологического подтверждения менингококкового назофарингита и выявления назофарингеального менингококкового носительства исследуют носоглоточную слизь.

8. Забор крови их вены на серологическое (РНГА, ИФА), биохимическое исследование.

9. Забор кала и рвотных масс на холеру (Ф 30)

10. Забор крови на гемокультуру (стерильность)

АЛГОРИТМ

Специальность 34.02.01 Сестринское дело

АЛГОРИТМ

Специальность 34.02.01 Сестринское дело

Примечание:При невозможности быстрой доставки допускается хранение пробирки с материалом в холодильнике при температуре +4-6 градусов не более 6 часов.

АЛГОРИТМ

Специальность 34.02.01 Сестринское дело

Примечание:При невозможности быстрой доставки допускается хранение пробирки с материалом в холодильнике при температуре +4-6 градусов не более 6 часов.

АЛГОРИТМ

Специальность 34.02.01 Сестринское дело

Критерии оценок

АЛГОРИТМ

«Забор промывных вод желудка

Специальность 34.02.01 Сестринское дело

При невозможности своевременной доставки материала в бак. лабораторию, возможно хранение забранного материала в холодильнике при температуре +4-+6 градусов в течении 2-3 часов

Критерии оценок

АЛГОРИТМ

Специальность 34.02.01 Сестринское дело

Критерии оценок

АЛГОРИТМ

Специальность 34.02.01 Сестринское дело

при невозможности доставки материала сразу же в лабораторию - вечернее время, выходные дни, пробы клинического материала хранят в холодильнике при температуре 4-6 °С, не более 2 часов, затем передают в лабораторию

Критерии оценок

АЛГОРИТМ

Специальность 34.02.01 Сестринское дело

При невозможности быстрой доставки допускается хранение пробирки с материалом в холодильнике при температуре +4-6 градусов не более 2х часов.

При отрицательной температуре воздуха в термосумку помесить теплую грелку с температурой воды 37-38 градусов.

Критерии оценок

АЛГОРИТМ

Специальность 34.02.01 Сестринское дело

Примечание

У больных с легкой формой материал брать в количестве 1-2 грамма.

При обильном водянистом стуле взять материал с помощью резинового катетера, который вводят в прямую кишку, другой конец опускают во флакон.

Об актуальных изменениях в КС узнаете, став участником программы, разработанной совместно с АО "Сбербанк-АСТ". Слушателям, успешно освоившим программу выдаются удостоверения установленного образца.


Программа разработана совместно с АО "Сбербанк-АСТ". Слушателям, успешно освоившим программу, выдаются удостоверения установленного образца.

Продукты и услуги Информационно-правовое обеспечение ПРАЙМ Документы ленты ПРАЙМ Правила взятия образцов биоматериала для лабораторного обследования больных с симптомами менингита, а также контактных лиц (утв. Федеральным медико-биологическим агентством 10 июля 2013 г.)


Обзор документа

Правила взятия образцов биоматериала для лабораторного обследования больных с симптомами менингита, а также контактных лиц (утв. Федеральным медико-биологическим агентством 10 июля 2013 г.)

Менингиты могут иметь как бактериальную этиологию (бактериальные менингиты), так и вирусную (серозные менингиты).

1. При менингитах бактериальных, вызванных Neisseria meningitidis (менингококк), Haemophilus influenzae (гемолитическая палочка) или Streptococcus pneumoniae (пневмококк) с диагностической целью необходимо исследовать:

1.1 образцы спинномозговой жидкости (СМЖ, ликвор) - обязательное исследование.

Определение показаний к проведению люмбальной пункции и ее выполнение осуществляется врачом-клиницистом в первые дни болезни.

1.2 мазки из ротоглотки - как дополнительное исследование в первые 3-4 дня от начала заболевания.

Получение отрицательного результата при исследовании мазка из ротоглотки не является диагностическизначимым и необходимо провести исследование образца СМЖ, ликвора в связи с широким распространением бессимптомного носительства этих возбудителей среди населения разных возрастных групп.

2. При менингитах, вызванных энтеровирусами, с диагностической целью необходимо исследовать не менее двух различных клинических образцов из ниже перечисленных:

2.1 образцы спинномозговой жидкости (СМЖ, ликвор) - обязательно,

2.2 материал из везикул (при их наличии),

2.3 образцы фекалий - две пробы фекалий отбирают в течение 7 дней после начала болезни, но не позднее 14 дней с интервалом 24-48 часов.

2.4. мазки из ротоглотки,

2.5 кровь (сыворотка и/или плазма). Пробы крови для иммунологического исследования берут в виде парных сывороток: первую отбирают как можно раньше после начала заболевания, вторую на 3-4 неделе в стадии реконвалесценции.

Параллельно кровь исследуется на наличие РНК вируса (кровь с ЭДТА), но следует помнить, что возбудитель в крови у больного циркулирует очень непродолжительное время.

3. Клинический материал, подлежащий исследованию от контактных с больным серозным или вирусным менингитом

Для обследования контактных с больным бактериальным менингитом достаточно исследовать только мазок из ротоглотки.

Для обследования контактных с больным менингитом вирусной этиологии можно исследовать мазок из ротоглотки и/или образцы фекалий.

Исследование клинического материала для определения наличия ДНК/РНК возбудителя проводится методом ПЦР в режиме реального времени.

4. Инструкция по правилам взятия клинического материала

Эффективность проведения лабораторного исследования зависит от правильного сбора соответствующих материалов и транспортировки их в лабораторию. Необходимо исключить контаминацию одной пробы от другой.

Для успешного лабораторного исследования необходимо проводить как можно более ранний отбор проб. Для отбора проб используются стерильные контейнеры, пробирки.

Пробы с отобранным материалом помещают в пластиковые мешки так, чтобы избежать протечек и повреждений. Все материалы должны сопровождаться соответствующими документами - направлением на исследование.

Транспортирование проб осуществляется в термоконтейнерах при температуре +2-8°С.

4.1. Спинномозговая жидкость (СМЖ, ликвор)

Взятие материала. Определение показаний к проведению люмбальной пункции и ее выполнение осуществляется в первые дни болезни врачом-клиницистом. СМЖ в количестве не менее 1 мл получают используя одноразовые иглы и одноразовые пластиковые пробирки объемом 1,5 или 2,0 мл.

Условия хранения до момента доставки в лабораторию:

- при температуре +2-8°С - в течение 1 суток;

4.2. Материал из везикул

Взятие материала. Перед взятием материала кожные элементы очищают ватным тампоном, смоченным спиртом, затем прокалывают их у основания стерильной иглой с одноразовым шприцем и отбирают содержимое. Для облегчения процедуры везикула может сдавливаться стерильным инструментом. Собранное содержимое помещают в одноразовые пластиковые пробирки объемом 1,5 или 2,0 мл. Рекомендуется проводить взятие материала из пяти элементов и исследовать их как единый образец.

Условия хранения до момента доставки:

- при температуре +2-8°С - в течение 1 суток;

4.3. Кровь (цельная, плазма)

Взятие материала. Для получения плазмы забор крови проводят натощак или через 3 часа после приема пищи из локтевой вены одноразовой иглой в специальную вакуумную систему (сиреневые крышки - 6% ЭДТА) или одноразовым шприцем в пластиковые пробирки с цитратом натрия (3,8%-ный раствор цитрата натрия в соотношении 1:9). Пробирку закрывают крышкой и аккуратно переворачивают несколько раз вверх дном, чтобы кровь в пробирке тщательно перемешалась с антикоагулянтом (в противном случае кровь свернется, и выделение ДНК/РНК станет невозможным). Гепарин в качестве антикоагулянта использовать нельзя!

Условия хранения до момента доставки:

Образцы цельной крови:

- при температуре 20-25°С - в течение 2 часов;

- при температуре +2-8°С - в течение 12 часов с момента взятия материала для качественного определения нуклеиновых кислот;

Недопустимо замораживание образцов цельной крови.

- при температуре +2-8°С - в течение 5 суток;

4.4. Образцы фекалий

Взятие материала. Забор образцов фекалий производится из одноразовых подгузников (дети младшего возраста) или из одноразовой емкости (чашка Петри, одноразовый пластиковый пакет и т.д.), помещенной в судно для дефекации. При использовании одноразового подгузника, у детей с водянистой консистенцией фекалий для получения достаточного количества образца в подгузник перед использованием помещают ватный тампон. N.B. Не допускается забор образца фекалий непосредственно из судна для дефекации или другой емкости многократного использования (вне зависимости от методов их дезинфекции). Забор образца фекалий производят одноразовым ватным зондом (предоставляется лабораторией). Забираемый материал должен полностью пропитать рабочую часть зонда. При возможности зондом собираются сгустки материала. После забора материала зонд помещается в пробирку с транспортной средой и оставляется в ней. N.B. При заборе материала не допускается контаминация им наружной поверхности пробирки и одноразовых перчаток. При возникновении контаминации производится замена перчаток и повторное взятие материала.

Образцы нативных фекалий

- при температуре +2-8°С - в течение 3 суток;

4.5. Мазки из ротоглотки

Взятие материала. Мазки берут сухими стерильными ватными тампонами на пластиковой основе вращательными движениями с поверхности миндалин, небных дужек и задней стенки ротоглотки. После взятия материала тампон (рабочую часть зонда с ватным тампоном) помещают в одноразовую пластиковую пробирку объемом 1,5 или 2,0 мл. со специальной транспортной средой (или физ. раствором) и аккуратно обламывают пластиковый стержень на расстоянии не более 0,5 см от рабочей части, оставляя рабочую часть зонда с материалом в транспортной среде. Пробирку плотно закрывают крышкой.

- при температуре +2-8°С - в течение 3 суток;

- Информационное письмо по правилам забора, хранения и предварительной обработке образцов клинического материала при обследовании на энтеровирусную инфекцию, ассоциированную с энтеровирусом 71 типа (EV71);

- Инструкции к наборам реагентов для определения ДНК/РНК инфекционных агентов методом ПЦР в реальном времени.

Врач-вирусолог - Авдеенко Т.Ф.

Врач-вирусолог- Городилова Н.Б.

Заместитель главного врача,
руководитель ИЛЦ, дмн
О.А. Тарасенко

Обзор документа

Определено, как у больных с симптомами менингита, а также у контактных лиц забираются образцы биоматериала для лабораторного исследования.

Менингиты могут иметь как бактериальную, так и вирусную этиологию.

При бактериальных менингитах в целях диагностики исследуются, во-первых, образцы спинномозговой жидкости (СМЖ, ликвор). Это обязательно. Врач-клиницист определяет показания к люмбальной пункции и выполняет ее в первые дни болезни. Во-вторых, дополнительно в первые 3-4 дня с начала заболевания исследуются мазки из ротоглотки. Если при исследовании мазка получен отрицательный результат, то это не является диагностически значимым. Нужно исследовать образец СМЖ, ликвора.

При менингитах, вызванных энтеровирусами, в целях диагностики необходимо исследовать не менее 2-х различных клинических образцов из ниже перечисленных. Первое - образцы спинномозговой жидкости (СМЖ, ликвор). Это обязательно. Второе - материал из везикул (при их наличии). Третье - образцы фекалий. Четвертое - мазки из ротоглотки. Пятое - кровь (сыворотка и (или) плазма).

Для обследования контактных с больным бактериальным менингитом достаточно исследовать только мазок из ротоглотки. При менингите вирусной этиологии можно исследовать мазок из ротоглотки и (или) образцы фекалий. Для определения наличия ДНК/РНК возбудителя клинический материал исследуется методом ПЦР в режиме реального времени.

Приведены правила взятия клинического материала.

Для просмотра актуального текста документа и получения полной информации о вступлении в силу, изменениях и порядке применения документа, воспользуйтесь поиском в Интернет-версии системы ГАРАНТ:


Посев крови – метод бактериологического исследования, использующийся для достоверного определения наличия бактерий в крови.

Посев используют для выявления в ней различных микроорганизмов приходится делать при многих заболеваниях. Посев крови осуществляют для обособленности, чтобы идентифицировать болезнетворных бактерий при бактериемии.

Бактериемия - это проникновение бактерий в кровь при генерализации инфекции в организме человека, заражении крови (сепсис). Данный вид анализа проводится в лабораториях медицинских учреждений.

Делают посев крови на жидкие питательные среды:

  • желчный бульон,
  • сахарный бульон,
  • жидкие и полужидкие среды для выращивания микробов анаэробов.

Сколько раз нужно сдавать Бак посев крови

Для обнаружения микроорганизмов требуется несколько анализов не менее 3, так как количество бактерий в крови может колеблется.

Определенные виды бактерий можно выделить только специальными бактериологическими посевами (бак посев) крови.

Бак посев крови - что показывает

Бак посев крови показывает чувствительность к антибиотикам той или иной группы бактерий. Определив вид выращенной колоний бактерий после посева, (микробиологического исследования) можно подобрать эффективные антибиотики против именно этой группы микроорганизмов (так называемый посев крови на стерильность).

  • Это важно! Перед анализом на посев крови на инфекции - Не принимайте анатибиотики!

Обнаружить бактерии будет трудно или вообще невозможно, если человек перед анализом посева крови принимал антибиотики, при продолжающемся инфицировании болезнетворными микроорганизмами.

Как сдавать кровь на бак посев

Для наиболее точного диагностирования заболеваний недостаточно самого современного лабораторного оборудования.

Точность результатов зависит не только от используемых реактивов и аппаратуры, но и от времени и правильности сбора исследуемого материала. При несоблюдении основных правил подготовки к анализам их результаты могут быть значительно искажены.

Для исследования крови более всего подходят утренние часы

Для большинства исследований кровь берется строго натощак.

Кофе, чай и сок – это тоже еда.

Можно пить воду.

Рекомендуются следующие промежутки времени после последнего приема пищи:

  • для общего анализа крови не менее 3-х часов;
  • для биохимического анализа крови желательно не есть 12-14 часов (но не менее 8 часов).

За 2 дня до обследования необходимо отказаться от алкоголя, жирной и жареной пищи.

За 1-2 часа до забора крови не курить.

Перед исследованием крови следует максимально снизить физические нагрузки.

  • Исключить бег, подъем по лестнице.
  • Избегать эмоционального возбуждения.
  • Минут10-15 нужно отдохнуть, расслабиться и успокоиться.

Нельзя сдавать кровь сразу после физиотерапевтических процедур, ультразвукового и рентгенологического исследования, массажа и рефлексотерапии.

Перед сдачей крови нужно исключить перепады температур, то есть баню и сауну.

Перед гормональным исследованием крови у женщин репродуктивного возраста следует придерживаться рекомендаций лечащего врача о дне менструального цикла, в который необходимо сдать кровь, так как на результат анализа влияют физиологические факторы фазы менструального цикла.

Перед сдачей крови необходимо успокоиться, чтобы избежать немотивированного выброса в кровь гормонов и увеличение их показателя.

Для сдачи крови на вирусные гепатиты желательно за 2 дня до исследования исключить из рациона цитрусовые, оранжевые фрукты и овощи.

Для правильной оценки и сравнения результатов ваших лабораторных исследований рекомендуется проводить их в одной и той же лаборатории

В разных лабораториях могут применяться разные методы исследования и единицы измерения показателей.

Бак посев можно назвать древним анализом, однако его популярность от этого отнюдь не падает, хотя современная бактериология имеет возможности найти и выделеть не только штаммы, но и отдельной клетки из него, которая называется клоном.

Однако для получения клона необходим специальный прибор – микроманипулятор, который в обычных лабораториях отсутствует, поскольку применяется, в основном, в научно-исследовательских целях (генетические исследования).

Посев менструальной крови на туберкулез

Результат оценивается после трехкратного посева. На посев берутся выделения из влагалища, менструальную кровь, соскоб или смыв эндометрия, содержимое очагов воспаления (например, из язв на шейке матки).

Даже проведение трехкратного посева дает низкий процент высеваемости палочек Коха. В дополнение используют ПЦР полученного биологического материала.

Посев крови на грибковые инфекции

Количественную оценку грибковой инфекции можно дать с помощью посева грибков (культуральный метод).

Для таких целей материал с кожи, ногтей или волос собирают, как и в случае микроскопического исследования, далее:

  • Биологический материал переносят в специальную питательную среду.
  • Если во взятых образцах были грибки, то через некоторое время вырастают колонии.
  • Затем колонии изучаются под микроскопом, что позволяет определить род и вид грибка, а также его концентрацию.

Кроме того, возможно и проведение тестов на чувствительность грибков к определенным противогрибковым препаратам, что позволяет подобрать больному оптимальную схему лечения.

Посев крови на аэробные и анаэробные бактерии

Посев крови необходим для определения возбудителя инфекционного процесса. В норме кровь является стерильной и только при определенной части заболеваний, в нее могут проникать микроорганизмы.

Такой тип инфицирования называется бактериемией.

Наиболее тяжелый вариант бактериемии – сепсис (септицемия, септикопиемия), но данное состояние проявляется яркой клинической картиной и в основном является уделом стационаров (в том числе отделения реанимации).

Не всегда наличие возбудителя в крови приводит к сепсису. Возможна даже физиологическая бактериемия (она кратковременная и может возникать, например, при чистке зубов и неосторожном травмировании десен).

И все же, если микроорганизм попал в кровь, необходимо его выделить, определить и выяснить, к каким антимикробным препаратам он может быть чувствителен.

В этом случае применяется посев на аробные и анаэробные бактерии.

Аэробные бактерии имеют зависимость от кислорода (то есть их размножение без кислорода невозможно или возможно, но очень кратковременно).

Анаэробные бактерии в свою очередь имеют способность размножаться и без присутствия вокруг них источников кислорода.

Другое название для посева на аэробные и анаэробные бактерии является посев крови на стерильность.

Как и в любом другом исследовании, посев может быть ложноотрицательным, это связано со спецификой забора крови при данном исследовании (очень часто, забор крови нужно проводить на высоте лихорадки – повышения температуры тела).

Ложноположительный результат – при несоблюдении правил стерильности лабораторного инструментария, что в современных лабораториях крайне недопустимо и обычно такого не происходит.

В некоторых случаях для подтверждения диагноза необходимо использовать трехкратный посев на стерильность, то есть кровь забирается три раза с небольшим промежутком во времени.

После успешного забора крови для посева на аэробные и анаэробные бактерии, данный материал помещают на питательную среду. В течение определенного времени начинается рост колоний бактерий, присутствующих в кровотоке пациента.

При помощи различных лабораторных тестов исследователь проводит идентификацию бактерии, а также выполняет тест на чувствительность к антибактериальным препаратам, что в дальнейшем поможет лечащему врачу назначить наиболее эффективное лечение болезни.

Бак посев крови на стафилококк

Если возникает подозрение, что в теле развивается стафилококк, в первую очередь, не надо паниковать.

Обнаружение стафилококка клиническом посеве в концентрации 10 в 3 степени при бессимптомном носительстве не угрожает человеку. Вам необходимо обратить внитание на укрепление иммунитета.

Для точного определения, стафилококк ли является возбудителем заболевания, у больного берут на исследование биоматериалы. Это может быть кровь, содержимое гнойничков, отходящая мокрота, а в некоторых ситуациях и спинномозговая жидкость.

Значимые показатели анализа – выявление в сыворотке крови антител к антигенам стафилококка. Для этого используют реакцию торможения гемолиза, реакцию пассивной гемагглютинации. Одновременно проверяется чувствительность бактерии к различным противомикробным препаратам, чтобы в последующем сделать правильный выбор лекарства для борьбы с ним.

В случае если человек относится к группе пациентов с повышенным риском стафилококковой инфекции (из-за перенесенных заболеваний, других причин, вызвавших ослабление иммунной системы), врач может рекомендовать прохождение быстрого теста на коагулазу.

Такое тестирование – надежный способ определения кокков в крови. Если он покажет положительный результат – значит возбудителем стал золотистый стафилококк, если отрицательный – эпидермальный или сапрофитный.

Посев крови на гемокультуру - алгоритм

Итак, материалом для бактериологического посева является кровь в количестве 5 – 10 мл, полученная из локтевой вены.

Участок кожи обрабатывается сначала ватным шариком, смоченным в 70 % - ном этиловом спирте, а затем другим ватным шариком, смоченным в 1 – 2 % - ном растворе йода, до полного высыхания кожи.

Алгоритм здесь может быть такой же, как и при заборе крови вакуумными шприцами с той разницей, что вместо пробирки в переходник вставляется гемокультурный флакон.

В месте венепункции йод вытирают спиртом и заклеивают этот участок пластырем. Пластиковую крышку данного флакона отламывают, обеззараживают внутреннюю поверхность крышки 70 % этиловым спиртом.

При температуре 37°С кровь нужно хранить не более 2–х часов!

Лучше всего произвести посев крови на питательную среду сразу после её забора.

Соотношение крови и питательной среды – 1: 10,осторожно перемешать.

Для получения наиболее достоверного результата проведение анализа должно быть как минимум двоекратным из разных рук с интервалом времени в 30 минут.

Читайте также: